Schauer等對胞內細胞因子的測定作出綜合評價，標本來源包括末梢血單個核細胞、腫瘤細胞、組織細胞等，檢測方法常用免疫組化法，主要為堿性磷酸酶抗堿性磷酸酶（APAAP）技術[6] 和測定mRNA的熒光原位雜交技術（FISH），此外還有顯微熒光法，將單個細胞用多聚甲醛固定，皂素滲透后，行間接免疫熒光染色，以及Schauer等[5]介紹的用刺激劑PMA（佛波酯）和Ionomycin刺激細胞，使細胞因子向高爾基體積聚，用BFA或Monensin阻斷細胞因子向胞膜外轉運，然后用流式細胞儀檢測的方法，總的來說 TH1型細胞因子的檢測相對容易，因為TH1型細胞能表達大量IL-2或IFN-γ，而TH2型細胞因子如IL-4、IL-5、IL-10的檢測相對困難，主要原因是TH2型細胞在標本中的出現頻率較低，所以有人建議用CD45RO+ 細胞來代替TH2的檢測 [6]。
酶聯免疫點法
（enzme-linked immunospot assay，ELISA）將抗細胞因子抗體包被反應板，加入待測T細胞，孵育一段時間后，加酶標記抗細胞因子抗體的酶作用底物，通過細胞的比色印跡法檢測信號，最后通過圖像掃描或專用的酶標儀進行分析。ELISPOT法引入生物素，親合素放大系統后，靈敏度大為提高，在測定產生細胞因子陽性細胞頻度方面，與流式細胞儀法相平行，但后者可同時描述細胞性質和其他因子的產生情況，且結果更為客觀，ELISPOT法一般雙ELISA夾心法靈敏，因為其充分利用細胞因子在細胞分泌部位聚集濃度高的特點，并且ELISPOT法能夠對每個細胞的分泌物定量。