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  • 發布時間:2019-09-12 11:15 原文鏈接: 基于PCR的差減cDNA克隆實驗

               

    實驗方法原理
    實驗材料

    A 和 B 類細胞的雙鏈 cDNA (ds cDNA)

    試劑、試劑盒

    ALuI RsaI ATP T4 多聚核苷酸激酶及其緩沖液 DNA連接酶和及其緩沖液 Taq DNA聚合酶及其緩沖液 寡核苷酸引物 4dNTP 混合物 驅動 dNTP 混合物 轉化感受態菌株 HEPES緩沖液 鏈霉親和素溶液 差減雜交緩沖液 聚乙二醇 8000 苯酚 氯仿 氯仿 礦物油 乙醇 MgCl2 NaCl

    儀器、耗材

    放射性標記的差減探針 PCR 管 微量離心管 離子交換PCR離心柱 Sephacryl S-300 離心柱 離心機 熱循環儀 手提式蓋格計數器 加熱塊

    實驗步驟

    實驗所需「材料」、「試劑」、「耗材」具體見「其他」

    1. 對每一組 ds cDNA (A 和 B)配制 2 個限制性內切核酸酶消化反應(AluI 和 AluI+Rsal):

    30 ng ds cDNA

    3 ul 10×AluI 緩沖液

    10 U AluI 或 10 U AluI+10 U RsaI

    加水到 30.0 ul。

    37℃ 溫育過夜,確保完全消化。

    最好使用產生平端的酶。如果不是產生平端的酶,需要另外補平或削平。


    2. 65℃溫育超過10 min失活內切酶。


    3. 激酶處理寡核苷酸 a1 和 b1, 使用如下反應體系(每個反應體系 25 ul):

    18.0 ul H2O

    2.5 ul 10 mmol/L ATP

    2.5 ul 10×T4 多聚核苷酸激酶緩沖液

    1.5 ul 3 ug/ul 的寡核苷酸 a1 或 b1

    0.5 ul 10 U/ul T4多聚核苷酸激酶

    37℃ 溫育 60 min。


    4. 65℃溫育20 min失活激酶。


    5. 加入 1.5 ul 的寡核苷酸 a2 或寡核苷酸 b2 形成 a1/a2 或 b1/b2 連接子。混勻,最高速離心。45℃ 溫育 10 min。


    6.在 0.5 ml 的 PCR 管里,用合適的連接子為每組 cDNA 配制連接反應(130 ul 每個反應):

    63 ul H2O

    13 ul 10× T4 DNA 連接酶緩沖液

    30 ul 40% PEG 8000

    1ul 15 mmol/L ATP

    10 ul AluI 消化的 cDNA

    10 ul AluI/RsaI 消化的 cDNA

    2 ul a1/a2 或 b1/b2 連接子

    1ul 10 U/ul T4 DNA 連接酶

    混勻,16℃溫育2 h。


    7. 將反應管放于冰上超過10 min。


    8. 根據廠家說明書準備 Sephacryl S-300 離心柱。


    9. 每個連接反應中加入 1 ul 75 mmol/L 的 ATP 和 1 ul T4 多聚核苷酸激酶。37℃ 溫育 30 min。


    10. 用 1 倍體積的 25:24 的苯酚/氯仿和氯仿依次抽提連接反應。


    11. 連接產物離心過 Sephacryl S-300離心柱 ,除去未連接的連接子,用 Beckman Accuspin FR 離心機的吊桶轉子室溫,400 g 離心 2 min。


    12. 兩組 cDNA , 各配制 50 ul PCR反應體系:

    35 ul H2O

    5 ul 10×Taq DNA 聚合酶緩沖液

    3 ul 25 mmol/L MgCl2

    1 ul 10 mmol/L 4dNTP 混合物

    0.5 ul 2.5 ug/ul 寡核苷酸 a2 或寡核苷酸 b2

    5 ul 0.2 ng/ul 連接好的 cDNA A 或 cDNA B

    0.5 ul 5 U/ul Taq DNA 聚合酶

    加入幾滴無菌的 PCR 級的礦物油覆蓋反應體系。


    13. 用下面的 PCR 程序擴增 cDNA :

    30 個循環:

    1min 94℃ (變性)

    1 min 50℃ (復性)

    2 min 72℃ (延伸)

    25 s 72℃ (自動延伸)

    對于沒有自動延伸的熱循環儀,延長延伸時間為 2~4 min。


    14. 用瓊脂糖凝膠電泳分析 5~10 ul 擴增好的 cDNA, 確定擴增 cDNA 的大小范圍 (150 bp~1. 5 kb, 大部分為 250 bp)


    15. 對兩組擴增好的 cDNA, 各配制以下由放射性標記的測試 cDNA 的 PCR 反應體系 (每個反應體系 100 ul):

    77 ul H2O

    10 ul 10×Taq DNA 聚合酶緩沖液

    6 ul 25 mmol/L MgCl2

    2 ul 10 mmol/L 4dNTP 混合物

    1 ul 稀釋的[32P] dCTP

    1ul 2.5 ug/ul 寡核苷酸 a2 或寡核苷酸 b2

    2 ul A0 或 B0 cDNA (約 0.4 ug)

    1 ul 5 U /ul Taq DNA 聚合酶

    加入幾滴無菌的 PCR 級的礦物油覆蓋反應體系。


    16. 對兩組擴增好的 cDNA, 各配制 3 或4 個由生物素標記的驅動 cDNA 的 PCR 反應體系(每個反應體系100 ul):

    73.3 ul H2O

    10 ul 10×Taq DNA 聚合酶緩沖液

    6 ul 25 mmol/L MgCl2

    6.7 ul 驅動 dNTP

    1ul 2.5 ug/ul 寡核苷酸 a2 或寡核苷酸 b2

    2 ul cDNA A0 或 cDNA B0 (1~5 ng)

    1 ul 5 U/ul Taq DNA 聚合酶

    加入幾滴無菌的 PCR 級礦物油覆蓋反應體系。


    17. 用步驟 13 中的 PCR 擴增程序進行測試和驅動 cDNA 的合成。


    18. 按廠家說明,用商業化的陰離子交換 PCR 離心柱(Qiagen)純化擴增的 cDNA,去除未摻入的核苷酸、引物和鹽。


    19. 用分光光度計定量產物核酸。


    20. 配制 2 個雜交反應([32P] An-Bio-Bn 和[32P] Bn-Bio-An)。在一個 1.5 ml 硅烷化的微量離心管里,用乙醇沉淀 1 ug 放射性標記的測試 DNA 和 20 ug 的生物素標記的驅動 DNA,不要冷凍。風干沉淀,當沉淀剛剛干時,用吸頭輕輕吹吸,重新溶于 5 ul HEPES 緩沖液。用手提式蓋格計數器檢測重新溶解的核酸溶液。


    21. 轉移重新溶解的 DNA 到一個 0.5 ml 的PCR管里。加入 5 ul 68℃ 的 2× 雜交緩沖液進行差減雜交。輕輕吹吸混勻,加入數滴無菌的 PCR 級的礦物油覆蓋 DNA 溶液。最高速離心幾秒。


    22. 把兩個管子在 95℃加熱 10 min, 然后在 1 h 內慢慢冷卻到 68℃,并繼續在 68℃溫育 2 h (快速雜交)。


    23. 混合 7 ul 1 mol/L的 NaCl 和 140 ul HEPES 緩沖液,加熱到 68℃。加入到雜交反應中稀釋反應。混勻,最高速簡單離心。冷卻到室溫。


    24. 每管中取出 5 ul,保存(用作酚抽提前的總量計算)。


    25. 每管中加入15 ul 鏈霉親和素,渦旋混勻,室溫溫育 5 min。


    26. 每管用等體積的 25:24 的苯酚/氯仿抽提。保留水相轉移到新的管里。


    27. 每管的水相中加入 10 ul 鏈霉親和素。混勻,室溫溫育 5 min。


    28. 用苯酚/氯仿和氯仿各抽提兩次。測量每管的水相體積。


    29. 每管中取出 5 ul,保存(用作酚抽提后的總量計算)。

    被去除掉的測試cDNA的百分比用以下等式估算:

    % 去除的測試CDNA=100 一(酚抽提后總量 ×100/釀抽提前總量)


    30. 用 An 或 Bn 測試 cDNA 和合適的驅動 cDNA 重復差減的過程(步驟 15~29)。驅動 cDNA 的選擇由差減的策略決定。用 An 或 Bn 驅動 cDNA 進行快速雜交(2 h),用 A0 或 B0 驅動 cDNA 進行長時間雜交(30~40 h)。差減的進程用隙縫斑點雜交檢測。


    31. 用步驟 13 的程序擴增 5 ul 差減 cDNA (An 和 Bn)。用一個商業化的陰離子交換 PCR 離心柱純化 PCR產物(如Qiagen)。


    32. 用在連接子上有剪切位點的合適限制酶(針對于這里所用的連接子,如 Ec0RI 和 EcoRV)消化 cDNA。


    33. 苯酚/氯仿抽提,乙醇沉淀純化消化的 cDNA。


    34. 把 DNA 連接到合適的載體中(如 EcoRI 或 EcoRV 切開的 pBluescript)。


    35. 轉化載體到感受態細菌里。


    36. 鋪板培養差減文庫。

    值得先通過滴定文庫以獲得單克隆。確定含插入片段克隆的百分比和插入片段的大小也很重要。

    插入片段應當是 250 bp 左右。如果插入的片段 >500 bp, 則可以認為是插入了兩個片段。


    37. 從每個起始濾膜制備 4 個重復的印跡。


    38. 按照廠家說明,變性、中和和交聯印跡。


    39. 用差減探針雜交這些重復的濾膜。


    40. 從庫里隨機(如果估計庫里絕大多數是差異表達的基因)或按照探針的雜交結果挑取 50~100 個差異表達的克隆。準備小量的質粒 DNA。


    41. 對每個質粒里的插入片段進行測序,把含有相同序列的克隆歸在一起。


    42. 用起始組織的 RNA 分 析 [如 Northern 印跡、 RNase 保護分析、定量 RT-PCR 或者原位雜交確定這些克隆是否確實是差異表達的。

                展開           
    注意事項
    其他

    1. 材料

    A 和 B 類細胞的雙鏈 cDNA (ds cDNA)


    2. 試劑

    ALuI 和 10×ALuI 緩沖液

    RsaI

    10、15 和 75 mmol/L 的 ATP

    10 U/ul T4 多聚核苷酸激酶和 10×T4 多聚核苷酸激酶緩沖液

    寡核苷酸引物

    3 ug/ul a1: 5'-TAG TCC GAA TTC AAG CAA GAG CAC A-3’

    2.5 ug/ul a2: 5'-CTC TTG CTT GAA TTC GGA CTA-3'

    3 ug/ul B1: 5'-ATG CTG GAT ATC TTG GTA CTC TTC A-3'

    2.5 ug/ul B2: 5'-GAG TAC CAA GAT ATC CAG CAT-3’

    10 U/ul T4 DNA連接酶和 10×T4 DNA連接酶緩沖液

    40%(m/V)聚乙二醇 8000(PEG 8000)

    25:24(V/V)苯酚/氯仿(平衡酚配制)

    氯仿

    5 U/ul Taq DNA聚合酶和 10×Taq DNA 聚合酶緩沖液

    25 mmol/L MgCl2

    10 mmol/L 4dNTP 混合物

    礦物油,PCR級,無菌

    800Ci/mmol [α-32P] dCTP (10 Ci/ul)

    驅動 dNTP 混合物

    乙醇

    1 mol/L 和 5 mol/L NaCl

    HEPES緩沖液

    2× 差減雜交緩沖液

    鏈霉親和素溶液

    EcoRI 和 10×EcoRI 緩沖液或 EcoRV 和 10× EcoRV 緩沖液

    EcoRI 切開的 pBluescript 載體

    EcoRV 切開的 pBluescript 載體

    轉化感受態菌株


    3. 耗材

    放射性標記的差減探針

    0.5 ml 的 PCR 管

    Sephacryl S-300 離心柱(Amersham Pharmacia Biotech)

    Beckman Accuspin FR離心機和吊桶轉子或類似的其他離心機

    熱循環儀

    陰離子交換PCR離心柱(Qiagen)

    1.5 ml微量離心管,硅烷化

    手提式蓋格計數器

    加熱塊

    展開


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