小鼠細胞PCR反應體系與反應條件

小鼠細胞 PCR反應體系與反應條件

標準的PCR反應體系： 

　　　10×擴增緩沖液 　 10ul 

　　　4種dNTP混合物 　 各200umol/L 

　　　引物 　　　　 　 各10～100pmol　 

　　　模板DNA 　　　 　0.1～2ug　 

　 　 Taq DNA聚合酶 　 2.5u　 

　　　Mg2+　　　　　　 1.5mmol/L 

　　　加雙或三蒸水至 　100ul 

　　PCR反應五要素： 參加PCR反應的物質主要有五種即引物、酶、dNTP、模板和Mg2+

　　引物： 引物是PCR特異性反應的關鍵，PCR 產物的特異性取決于引物與模板DNA互補的程度。理論上，只要知道任何一段模板DNA序列， 就能按其設計互補的寡核苷酸鏈做引物，利用PCR就可將模板DNA在體外大量擴增。 

設計引物應遵循以下原則： 

①引物長度： 15-30bp，常用為20bp左右。 

②引物擴增跨度： 以200-500bp為宜，特定條件下可擴增長至10kb的片段。 

③引物堿基：G+C含量以40-60%為宜，G+C太少擴增效果不佳，G+C過多易出現非特異條帶。ATGCzui好隨機分布，避免5個以上的嘌呤或嘧啶 　核苷酸的成串排列。 

④避免引物內部出現二級結構，避免兩條引物間互補，特別是3’端的互補，否則會形成引物二聚體，產生非特異的擴增條帶。 

⑤引物3’端的堿基，特別是zui末及倒數第二個堿基，應嚴格要求配對，以避免因末端堿基不配對而導致PCR失敗。 

⑥引物中有或能加上合適的酶切位點， 被擴增的靶序列zui好有適宜的酶切位點， 這對酶切分析或分子克隆很有好處。 

⑦引物的特異性：引物應與核酸序列數據庫的其它序列無明顯同源性。引物量： 每條引物的濃度0.1～1umol或10～100pmol，以zui低引物　量產生所需要的結果為好，引物濃度偏高會引起錯配和非特異性擴增，且可增加引物之間形成二聚體的機會。 

　　 小鼠細胞酶及其濃度　目前有兩種Taq DNA聚合酶供應， 一種是從棲熱水生桿菌中提純的天然酶，另一種為大腸菌合成的基因工程酶。催化一典型的PCR反應約需酶量2。5U（指總反應體積為100ul時），濃度過高可引起非特異性擴增，濃度過低則合成產物量減少。 

　　dNTP的質量與濃度　dNTP的質量與濃度和PCR擴增效率有密切關系，dNTP粉呈顆粒狀，如保存不當易變性失去生物學活性。dNTP溶液呈酸性，使用時應配成高濃度后，以1M NaOH或1M Tris。HCL的緩沖液將其PH調節到7.0～7.5，小量分裝， -20℃冰凍保存。多次凍融會使dNTP降解。在PCR反應中，dNTP應為50～200umol/L，尤其是注意4種dNTP的濃度要相等（ 等摩爾配制），如其中任何一種濃度不同于其它幾種時（偏高或偏低），就會引起錯配。濃度過低又會降低PCR產物的產量。dNTP能與Mg2+結合，使游離的Mg2+濃度降低。 

　　模板（靶基因）核酸　模板核酸的量與純化程度，是PCR成敗與否的關鍵環節之一，傳統的DNA純化方法通常采用SDS和蛋白酶K來消化處理標本。SDS的主要功能是： 溶解細胞膜上的脂類與蛋白質，因而溶解膜蛋白而破壞細胞膜，并解離細胞中的核蛋白，SDS 還能與蛋白質 

結合而沉淀； 蛋白酶K能水解消化蛋白質，特別是與DNA結合的組蛋白，再用有機溶劑酚與氯仿抽提掉蛋白質和其它細胞組份，用乙醇或異丙醇沉淀核酸。提取的核酸即可作為模板用于PCR反應。一般臨床檢測標本，可采用快速簡便的方法溶解細胞，裂解病原體，消化除去染色體的蛋白質使靶基因游離，直接用于PCR擴增。RNA模板提取一般采用異硫氰酸胍或蛋白酶K法， 

要防止RNase降解RNA。 

　　Mg2+濃度　Mg2+對PCR擴增的特異性和產量有顯著的影響，在一般的PCR反應中，各種dNTP濃度為200umol/L時，Mg2+濃度為1.5～2.0mmol/L為宜。Mg2+濃度過高，反應特異性降低，出現非特異擴增，濃度過低會降低Taq DNA聚合酶的活性，使反應產物減少。