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  • 發布時間:2019-09-17 16:38 原文鏈接: 小鼠腹腔巨噬細胞培養實驗

               

    實驗方法原理 取小鼠腹腔巨噬細胞與乳膠顆粒在不同培養條件下混合后定量加入24孔板,37 ℃,5% CO2 培養箱中孵育后,熒光顯微鏡下計數吞噬百分率和吞噬指數。
    實驗材料

    小鼠

    試劑、試劑盒

    1640 培養基 小牛血清 雙抗 臺盼蘭

    儀器、耗材

    手術器械 一次性注射器 眼科鑷 眼科剪 96 孔板 CO2培養箱

    實驗步驟

    一、實驗步驟

    1. 如果采用刺激物,則可在實驗前三天腹腔注射3%巰基乙醇酸鈉每只2 mL,獲得的巨噬細胞數要多一些。不采用刺激物,直接開始下面的步驟。

     

    2. 拉頸處死小鼠,在75%酒精浸泡1-2 分鐘,移入超凈臺中,仰臥位固定于解剖板上,碘酒消毒腹部皮膚,酒精綿球脫碘。用手術直剪充分剪開腹部皮膚,暴露腹部肌層,再用酒精綿球消毒腹部肌層。

     

    3. 用注射器抽取5mL 含雙抗的RPMI 1640 培養基注入腹腔,用綿球輕揉腹部1-2 min,然后,用眼科鑷稍提起腹腔,并用眼科剪剪開一個小口,用吸管吸取細胞懸液,移入離心管中(個人認為,此法比用注射器抽吸好一些)。

     

    4. 1000 rpm 離心5 min 后,用含雙抗的RPMI 1640 培養基洗滌一次,再次離心,重懸細胞于含10% 小牛血清的RPMI 1640 培養液中,如果是作為飼養細胞使用,則選擇相應的培養液。臺盼藍拒染法計數,將細胞稀釋到目的濃度后,接種即可。

     

    5. 如果是作為飼養細胞使用,調整濃度至2x105個/mL,接種到96 孔板中,每孔100-200μL;如 果作為其它實驗使用,可以調整成2x106/mL,加到 24 孔平底培養板中,1 mL/孔;5% CO2溫箱孵育2 h 后, 換液,并用RPMI 1640 培養基洗1-2 次,棄去未粘附細胞,貼壁細胞為單層的巨噬細胞。

    二、結果
     

    巨噬細胞剛貼壁時偏圓形,或者類似鵝卵石形狀,然后慢慢伸出偽足,鋪開呈三角形或多角形。巨噬細胞有吞噬的特性,當與細菌混合在一起的時候,在40 倍物鏡下可以看到巨噬細胞吞噬細菌,因此,巨噬細胞作為飼養細胞可以清除部分污染的細菌、支原體和部分細胞碎片。

                展開           
    注意事項

    1. 嚴格無菌操作,在超凈臺內進行;


    2. 為避免交叉感染,每一只小鼠更換注射器;


    3. 吸管吸取細胞懸液的時候,盡量不要吸到大小腸,否則容易引起成纖維細胞污染。 


    其他

    巨噬細胞一般沒有特殊的鑒定方法,有兩條經驗:


    1. 巨噬細胞是終末分化細胞,不會增殖


    2. 很難消化下來,所以接種的時候,必須直接接種到目的培養器皿中。 



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