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  • 發布時間:2019-09-17 17:00 原文鏈接: 旋轉瓶培養

               

    實驗方法原理 將細胞懸液加入到圓形培養瓶中,然后將培養瓶放在旋轉架上緩慢轉動。
    實驗材料

    D-PBSA 0.25%天然胰蛋白酶 單層細胞 二氧化碳

    儀器、耗材

    培養液和培養液容器 旋轉培養瓶 血細胞計數板或電子細胞計數器和計數用液體 旋轉架

    實驗步驟

    1. 用胰蛋白酶消化細胞,以通常密度種植。

    旋轉瓶中的氣相較大, 故用基于 Hanks 鹽和空氣氣相的培養基,可能需要向培養瓶內充入少量 5% CO2 (如 10 L/min,2 s)。如果培養液是用 CO2/HCO3 緩沖的, 氣相應該用 5% CO2 調整(20 L/min,30s~1 min,以瓶的大小決定)。

    2. 將培養瓶放在旋轉架上,以 20 rph 的速度轉動,直至細胞貼壁(24~48 h ) 。

    3. 細胞密度增大時,加快旋轉速度至 60~80 rph。

    4. 給細胞加培養液或收集培養液時,可將培養瓶取到無菌工作區,如通常一樣排出培養液,然后更換新鮮培養液。假如體積不是關鍵問題,輸血裝置或培養液袋對于添加新鮮培養液是有用的。如果培養液容量至關重要,可用吸管滴加或用一個蠕動泵計量。

    5. 收獲細胞:

    (a)棄去培養液,用 50~100 ml D-PBSA 浸洗細胞,然后棄去 D-PBSA。

    (b)在 4℃條件下,加入 50~100 ml 胰蛋白酶。用手或放在旋轉架上以 20 rpm 將培養瓶轉動 15 s。

    (c)吸出胰蛋白酶,將培養瓶內的細胞消化 5~15 min,然后加入培養液。

    (d)搖晃和轉動培養瓶,用滴管將細胞洗出。

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