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  • 發布時間:2019-04-11 17:55 原文鏈接: 染色體基因定位實驗

    實驗方法原理基因是由平均1000~3000核苷酸組成的序列,在光學顯微鏡下是難以識別的。為顯示染色體上特定基因必須具備以下三個重要條件:

    1.  需要具有能與目的基因相特異接
    合(互補)的核苷酸序列即探針(Probe);

    2.  需要有能與探針相結合的標記物(常用同位素
    和熒光素);

    3.  制備出良好的染色體標本。


    在進行定位時,首先要使標記物與探針相接合(Lable:標記),形成探針/標記物復合物,然后再使復合物與染色體DNA 進行雜交(Hybridization)。所謂雜交,即兩條來源不同的單鏈DNA能互補形成雙鏈DNA的過程。在一般情況下,染色體上被定位的目的基因和探針都是雙鏈狀態的DNA,兩者雜交只有在解鏈狀態下,即都變成單鏈時才能發生。溫度是使雙鏈DNA解鏈的條件,在80 ℃溫度下DNA即發生解鏈(變性)。因此當把染色體與探針置于同溫條件下,兩者便同時解鏈成為單鏈DNA;當溫度下降時,兩者DNA又重新恢復雙鏈狀態(復性);在復性中探針的單鏈即可與目的基因單鏈發生雜交。由于探針DNA 攜有標記物,用相應的方法能使標記物顯現成為可見形態。在用同位素作標記物時,可用放射自顯影法顯現探針/同位素;用熒光素作標記物時,探針/熒光素能在熒光顯微鏡下發光,從而可觀察到和確定探針的位點(也即目的基因存在位點)。標記探針與染色體基因(或細胞質mRNA)雜交定位法稱原位雜交(In Situ Hybridization)。

    實驗材料

    染色體標本

    試劑、試劑盒

    放射性核素

    實驗步驟

    一、放射性核素探針摻入程序


    1.  探針制備


    2.  缺口翻譯


    (1)同位素減壓濃縮

    取3H-dTTP(1 μC/ml)50 μl~100 μl,置入Eppendorf管中真
    空中減壓抽干;


    (2)缺口翻譯反應

    另取探針DNA1 μg加入Eppendorf管中,再加入10×缺口翻譯
    緩沖液5 μl;

    缺口翻譯緩沖液組成為

     

    Tris-Cl 緩沖液 0.5 M


    MgSO4 0.1 M


    二硫蘇糖醇 1 mM


    牛血清白蛋白 500 μg/ml


    (3)再加入dATP、dGTP、dCTP 各1 mM;用蒸餾水稀釋至50 μl;


    (4)混合

    移入已真空干燥含有3H-dTTP的Eppendorf管中,混勻;


    (5)加酶

    加入DNA 聚合酶I、DNA多聚酶I各1 ml,封口;


    (6)反應

    16 ℃中反應10 分鐘,加0.5 M EDTA終上反應;


    (7)探針分離

    將上述反應液加入Sephadex G50層析柱中,用TE洗脫分離。


    二、探針與染色體分子原位雜交


    1.  雜交液配制
     

    3H 標記探針 1.0 μg/ml


    甲酰胺 50.0 %


    硫酸葡萄糖 10.0 %


    EDTA 5.0 mM


    聚乙烯吡咯烷酮 0.04 %


    聚蔗糖 0.04 %


    牛血清白蛋白 0.04 %


    氯化鈉 300 mM


    檸檬酸鈉 300 mM


    磷酸鹽緩沖液 20 mM


    小牛胸腺DNA 50 μg/ml


    以上成分相混合,pH7.0±0.1。
     

    2.  探針變性

    將雜交液混合,置于70 ℃水浴中,作用5 分鐘后,再把含有雜交液的小管插入碎冰中。


    3.  染色體DNA 變性
     

    (1)在每張染色體標本上,加100 μg/ml RNA酶50 μl(為去除RNA),置一蓋玻片,置于潮濕皿中,37 ℃孵育1 小時;去除蓋片,浸入2×SSC 缸中漂洗4 次;


    (2)脫水

    過70%、80%,90%、100%酒精脫水;


    (3)變性

    置染色體標本入2×SSC 甲酰胺溶液中,70 ℃處理2 分鐘(不能過長);


    (4)迅速投入30%冷乙醇溶液中;


    (5)脫水

    同(2);


    (6)干燥

    自然干燥。


    4.  探針與染色體雜交


    (1)每一染色體標本上加雜交液50 μl,覆一蓋片;42 ℃于潮濕皿中雜交16 小時;


    (2)洗脫

    30~40 ℃下,50%甲酰胺溶液中洗5 次、2×SSC 溶液中洗5 次,0.1×SSC
    溶液洗3 次(洗脫過分影響雜交率);


    (3)脫水

    與前相同;


    (4)干燥

    自然干燥。


    5.  放射自顯影
     

    (1)涂片

    用國產核子乳膠(1:1)稀釋液涂片;


    (2)曝光

    4 ℃冰箱中曝光10 天后(比活性10cpm/μg 以上),取出;


    (3)顯影

    用D19B 顯影液,顯影2~5 分鐘;


    (4)定影

    柯達F-5 定影液定影10 分鐘;


    (5)水洗

    15 分鐘。


    6.  染色體顯帶
     

    (1)置已曝光片子浸入下液中
     

    Na2SO4 50.0 mM
     

    Na2B4O7 2.5 mM
     

    37 ℃,預處理10~30 秒;


    (2)染色

    迅速漫入10%Giemsa染色液中染2~3 分鐘;


    (3)水洗、干燥、鏡下觀察。

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    其他

    一、結果

    成功情況下可見:染色體分帶良好、除染色體外,在各處可見散在的、直徑1~3 微米的黑色圓形顆粒,有的顆粒位于染色體上,有的位于染色體間。觀察50~100 個分裂相,并統計顆粒存在于某號染色體上規律性位點、統計、在特定染色體的特定位點出現機率占8%~40%以上者,可視為該基因的位點。



    二、討論

    染色體DNA變性充分,利于與探針雜交,但變性過度不利顯帶。變性中加70
    %甲酰胺效果較好,能保證在較低溫度下進行變性和維持染色體形態。雜交液中加10%的硫酸葡聚糖較好,有提高雜交率作用,但不能過高,否則本底亦高。探針濃度亦應適當,過低需延長曝光時間,本底隨之增加;過高探針可自相結合影響雜交率。加入探針的量與DNA片段大小有關,經驗數值是,10 kb片段DNA濃度應為0.5~0.05 mg/L。

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