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  • 發布時間:2019-11-15 17:14 原文鏈接: 植物體內可溶性蛋白和非可溶性蛋白含量的測定實驗

    實驗方法原理


    植物材料經Tris-HCl緩沖液研磨、離心后,可溶性蛋白質溶于上清液中,非可溶性蛋

    白則存在于沉淀部分。將沉淀用堿水解,則會得到非可溶性蛋白的提取液。蛋白質提取

    液與考馬斯亮藍G-250反應呈藍色。在一定范圍內,蛋白質的含量與反應液在595nm波

    長的吸光度呈正比,由此可求出蛋白質的含量。

    實驗材料

    植物葉片                                                          

    試劑、試劑盒

    考馬斯亮藍溶液                                                                  

    HCl                                                                 

    MgCl2                                                                  

    EDTA                                                                  

    二硫蘇糖醇                                                                  

    牛血清蛋白標準母液                                                          

    儀器、耗材

    高速冷凍離心機                                                                  

    分光光度計                                                                  

    恒溫水浴                                                                 

    研缽                                                                 

    試管                                                                  

    移液管                                                                 

    洗耳球                                                          

    實驗步驟1. 牛血清蛋白標準曲線的制作

    (1)取6支試管,編號,按下表配制每管含量為0~100μg的牛血清蛋白標準液。

    加入表中試劑后,搖勻,以0號管為空白對照,在595nm波長處測定其吸光度(A)值。


    (2)標準曲線繪制

    以牛血清蛋白含量為橫坐標,吸光度值為縱坐標,繪制標準曲線。

    2. 蛋白質的提取

    稱取葉片0.3~0.5g,剪碎于冷凍過的研缽中加提取液3 ml,加少量石英砂,在

    冰浴中快速研磨成勻漿,勻漿倒入離心管中,再用5 ml提取液(分兩次)將研缽

    中勻漿洗入離心管,然后在10000 r/ min,4℃條件下離心20min,上清液即為

    可溶性蛋白質提取液。


    將離心所得的沉淀加3 ml 1mol·L-1NaOH溶液,在90℃恒溫水浴中加熱20min后,

    在4000 r / min,4℃條件下離心10min,上清液即為非可溶性蛋白質提取液。


    3. 測定

    上述兩種上清液各取0.1 ml分別放入2支試管中,每管再加Tris緩沖液0.9 ml,

    空白對照管加Tris緩沖液1 ml,然后各管分別再加入考馬斯亮藍染色液5 ml,

    搖勻,在595nm波長處測定吸光度(A)值。


    五、結果計算

    根據所測得的樣品液吸光度值,從標準曲線查出蛋白質含量,按下公式計算可

    溶性蛋白質和非可溶性蛋白質含量。




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