幼嫩組織的細胞處于旺盛的分裂階段，核較大而胞質較少，核酸濃度高，且內含物少、次生代謝產物少，蛋白質及多糖類物質相對較少，在SDS或 CTAB物質存在時，經機械研磨，使細胞破裂并釋放出內含物，提取的DNA、RNA的產量高，純度好。
提取DNA所用的提取液、吸頭、離心管等需要高壓滅菌以滅活DNase。RNase存在于所有的生物中，并且耐沸騰、蒸煮，所以在提取RNA的過程中要防止RNA酶污染，用具如吸頭、離心管、水、藥品等都要經RNase的抑制劑DEPC處理，即每100mL溶液中加入0.1～0.2
mL DEPC溶液，37℃過夜，然后高壓滅菌20 min以滅活DEPC。由于RNA容易降解，所有的提取步驟都在冰浴中進行。
DNA（RNA）定量分析可用紫外光譜分析，原理是DNA（RNA）分子在260
nm處有特異的紫外吸收峰，且吸收強度與DNA(RNA)的濃度成正比。此外，還可通過瓊脂糖凝膠電泳上顯示的DNA（RNA）帶的亮度來分析，因為EB
作為一種熒光染料，能插入DNA(RNA)的堿基對平面之間而結合于其上，在紫外光的激發下產生熒光，DNA(RNA)分子上EB的量與DNA分子的長度和數量成正比。在電泳時加入已知濃度的DNA（RNA）Marker作為DNA（RNA）分子量及濃度的參考，樣品DNA(RNA)的熒光強度就可以大致表示DNA（RNA）量的多少。這種方法的優點是簡便易行，可結合瓊脂糖凝膠電泳分析DNA(RNA)樣品的完整性來進行，缺點是不太準確。
本實驗介紹植物DNA、RNA提取及檢測的方法步驟。
一、試材及用具
試材:植物幼嫩組織（如幼葉、花器、幼根）。
儀器、用具:離心機、離心管、紫外分光光度計、微量移液器、吸頭、吸水紙、水浴鍋、冰箱、研缽、液氮罐、電子天平、pH計、高壓滅菌鍋、一次性手套和口罩、電泳儀、電泳槽等。
需配置的藥品和緩沖液:
提取DNA緩沖液（CTAB法）: 2% CTAB(W/V),100 mmol/L Tris-HCI pH 8.0, 20 mmol/L
EDTA pH 8.0, 1.4 mol·L-1 NaCl，2% PVP (滅菌后加入2% PVP
，使之充分溶解）。在研磨葉片前加入1%（V/V）?-巰基乙醇。
CTAB提取RNA緩沖液為：2% CTAB(W/V)，2% PVP(W/V)，25 mmol/L EDTA，100 mmol·L-1
Tris-Cl pH 8.0，2.0 mol·L-1 NaCl， 0.5 g·L-1
Spermidine（亞精胺）。滅菌后加入2%（V/V）?-巰基乙醇。
SSTE buffer為：1.0 mol/L NaCl，0.5%SDS，10 mmol/LTris-Cl pH 8.0，1 mmol/L EDTA。
TE(pH 8.0): 稱取1.211 g Tris、0.372 g EDTA-Na2 ，先用800 mL蒸餾水加熱攪拌溶解，用鹽酸調pH 8.0，再用蒸餾水定容至1000 mL。高壓滅菌20 min。
氯仿/異戊醇（24:1,v/v）: 將氯仿和異戊醇按體積24:1的比例混勻，置棕色瓶中，4℃保存。
酚: 氯仿:異戊醇(25:24:1):按飽和酚、氯仿、異戊醇體積比為25:24:1比例混勻，置棕色瓶中，4℃保存。
5× RNA電泳緩沖液的配制：依次加入以下成分: 10.46 g MOPS 、1.7 g乙酸鈉，0.93 g EDTA，調pH 7.0，定容到500 mL。
RNA 加樣緩沖液:1 mmol/L EDTA pH 8.0、0.25% 溴酚藍、0.25%二甲苯青、50%甘油，高壓滅菌。
二、方法步驟
（一）植物基因組DNA提取
在提取過程中用到的吸頭、研缽、提取緩沖液等先高壓滅菌20 min，取出后待用，按照下述步驟提取基因組DNA。
（1）在65°C水浴中預熱CTAB提取液。
（2）在液氮中研磨2～3 g新鮮或 -20°C冷凍的樣品材料。注意，要研成很細的粉末，動作要快。
（3）迅速加入CTAB提取液，混勻，倒入離心管中，65°C水浴30 min。其間不斷輕輕搖動離心管。
（4）加入5mol/L的乙酸鉀充分混勻，在冰浴中放置30 min中，4°C 12000 rpm離心5 min，吸上清。
注意，對于幼嫩葉片此步可以省略。對成熟的老葉片需采用。
（5）加入等體積的氯仿/異戊醇，混勻，放置10 min，12000 rpm常溫離心10 min。
（6）吸上清到新離心管中，用氯仿/異戊醇重復抽提一次。
（7）吸上清到新離心管中，加入2.5倍體積的無水乙醇，混勻，-20°C放置10～30 min沉淀DNA。
（8）10000 rpm常溫離心10 min。
（9）倒掉乙醇，用400 μL70%乙醇洗沉淀，然后用400μL100%乙醇洗沉淀，吹干后用200～500 μL TE溶解DNA。
（10）溶解后的DNA再用氯仿/異戊醇抽提一遍.
（11）吸上清到新離心管中，加入2.5倍體積的無水乙醇，混勻，-20°C放置10～30 min ,沉淀DNA。
（12）離心，棄上清，70%乙醇洗沉淀，再用100%乙醇洗沉淀，吹干后，用200 μLTE 溶解DNA。用紫外分光光度計測定濃度后，按要求的濃度（如200 μg·μL-1）再向DNA溶液中加入適量TE。在 -20°C冰箱中可長期保存。
注意，提取的DNA的質量由它的長度和純度決定。輕輕操作DNA溶液和快速冷凍植物組織對減輕機械剪切力和核酸酶切割非常重要，不能振蕩，不能使用太細口的吸頭，也不能吸得太快。多糖、蛋白質及木本植物中的酚類物質是植物DNA抽提中的主要污染物，提取材料要盡量使用幼嫩葉片。如果試材較老、多糖含量高，在提取緩沖液中應提高?-巰基乙醇的用量，且在用氯仿/異戊醇抽提之前先用酚:
氯仿:異戊醇抽提一遍，這樣去除蛋白較為徹底。所得DNA應為無色或灰白色，若呈褐色則有多酚類物質污染；對多糖含量高的材料，提取液中CTAB的濃度可增至3%或更高。
瓊脂糖電泳檢測DNA:
制作1%的瓊脂糖凝膠，吸取提取的DNA溶液 5 μL，電泳檢測，具體方法見實驗47。用λDNA做分子量大小的Marker，如果帶型不彌散，在與Marker 20 kb的帶的相應位置出現整齊明亮的條帶，說明基因組DNA完整，沒有降解。