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  • 發布時間:2020-08-11 09:55 原文鏈接: 模板DNA的準備、實驗的組織和PCR擴增實驗

    試劑、試劑盒 PCR 緩沖液ddH20基因組 DNAdNTP寡核苷酸引物

    儀器、耗材 離心機和轉子丙烯酸防護板過濾阻擋吸頭多道移液器PCR 儀托盤 固定器裝置底座管蓋小管

    實驗步驟

    一、材料


    1. 緩沖液、溶液和試劑


    含 15 mmol/LMgCl2 的 10XPCR 緩沖液 (GeneAmpPCR 緩沖液 I,AppliedBiosystems)


    滅過菌的 ddH20


    2. 酶和酶緩沖液


    TaqDNA 聚合酶,(AppliedBiosystems 或 Invitrogen)


    3. 核酸和寡核苷酸


    基因組 DNA


    10 mmol/L dNTP(GeneAmpPCRdNTP 混合物,AppliedBiosystems)


    寡核苷酸引物(Invitrogen 公司合成,稀釋成 lOumol/L)


    4. 離心機和轉子


    用翻轉吊桶式轉子和微板適配器離心


    5. 專用設備


    丙烯酸防護板(acrylicshield)


    過濾阻擋吸頭(filterbarriertips)


    多道移液器(Eppendorf 或 ApogentDiscoveries)


    PCR 儀,96 孔(AppliedBiosystemsGeneAmp9700)


    托盤/固定器裝置和底座,96 孔(AppliedBiosystems)


    管蓋,一條 8 個(USAScientific 或 AppliedBiosystems)


    小管,0.2 ml,一條 8 個(USAScientific 或 AppliedBiosystems)


    二、方法


    1. 在冰上融化 dNTP、10XPCR 緩沖液和未標記的引物。Taq 酶在加入反應混合物之前應保存在-20°C。在丙烯酸防護板后融化標記的引物。


    2. 每一個反應的混合物包括:


    滅菌 ddH20                                       6.95ul


    含 MgCl2 的 10XPCR 緩沖液            1.25ul


    10mmol/LdNTP                                  0.25ul


    10mmol/L 未標記引物                        0.5ul


    標記引物                                            0.5ul


    在優化實驗條件過程中,如果 PCR 產物的放射信號強度太低,可以增加標記引物的用量,同時按相應


    比例調整 ddH20 的體積。


    TaqDNA 聚合酶(終濃度為 0.25U)     0.05ul


    對于一個 96 孔微孔板,準備用于 100 個反應的混合物。


    3. 混勻,按等份加入放置在冰上的 PCR 板中(9.5ul/樣品)。


    4. 用多道移液器加入 3ulDNA(60ng),混勻。


    5. 把蓋子蓋緊,將板放入預熱到 94°C 的 PCR 儀中。


    6. 如果產物大小是 200bp, 擴增 30 個循環。循環參數如下:94°C 初始變性 5 min;30個循環的 94°C 變性 30s; 根據經驗確定的退火溫度(Tm) 退火 30s;72°C 延伸 30s。最后一步 72°C 延伸 7 min。值可以通過引物序列計算出來,公式為 2(A+T)+4(G+C)。


    7. 擴增完成后,將樣品于-20°C 凍存,或者直接進入方案 3。


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