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  • 發布時間:2020-07-13 17:37 原文鏈接: 正常關節軟骨細胞的短期培養

    實驗材料:
    1.    軟骨細胞來源:動物材料可選用未成年兔的膝關節、雞胚胸軟骨。人體材料可取自引產胎兒或成年人手術切除的軟骨標本;
    2.    清洗液:不含Ca2+和Mg2+的1×PBS,添加100IU/ml青霉素、100μg/ml鏈霉素,pH7.2;
    3.    消化液:0.2%膠原酶Ⅱ溶液,用PBS液配制,過濾除菌;
    4.    培養液:RPMI1640或Ham F12、DMEM培養基,一般在培養液中加20%—30%的小牛血清;
    5.    篩網:200目銅網;
     
    實驗方法:
    1.    用手術刀片從關節表面削下軟骨組織片,收集在PBS中。反復清洗除去軟骨片表面的血液以及可能誤帶的滑膜組織。新鮮軟骨呈乳白淺藍色、半透明狀,略具彈性;
    2.    將軟骨片充分剪成1mm3以下的組織塊,用PBS清洗2次;
    3.    按組織塊與消化液的體積比例為1:10的量加入消化液,置于37℃水浴中輕微振蕩消化5h以上,直至軟骨組織塊基本消失、溶液變渾濁為止。或采用分階段消化法。即每消化1h就過濾、離心1次,將分離后的軟骨細胞立即放入培養液中保存起來,這樣反復進行,直至所有軟骨組織塊消化完全;
    4.    以1500r/min離心10min。收集細胞;
    5.    加入PBS清洗細胞;
    6.    在細胞團中加入培養液制成細胞懸液,用200目銅網過濾,收集濾液;
    7.    計數細胞,根據需要調節細胞密度;
    8.    以1×105—1×106個/ml的密度接種。置于37℃、5%CO2、飽和濕度的CO2培養箱中培養。每2d換1次培養液;
    9.    細胞長滿瓶壁后,即可傳代。屆時,用PBS清洗培養物,加入0.125%胰蛋白酶溶液,37℃下消化。鏡下觀察可見大部分細胞間基質溶解消失。當細胞變圓時,小心傾出含酶液,加入培養液,吹打分散細胞;
    10.分瓶接種并培養
     

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