實驗方法原理
流式細胞儀的使用一般分為三個步驟。*,是儀器前階段,包括試劑的準備,細胞制備、細胞的熒光染色;第二,是流式細胞儀階段,主要是儀器的操作;第三,是結果分析階段。
實驗材料 淋巴細胞外周血的白細胞
試劑、試劑盒 FACS緩沖液PBS疊氮鈉溶液儀器緩沖液FACS清潔液FACS洗凈液
儀器、耗材 流式細胞儀
實驗步驟
一、細胞和試劑的準備
1. 細胞樣品:來源淋巴細胞或外周血的白細胞。
2. 熒光標記單克隆抗體:常用的有FITC(fluorescein -isothiocyanate)和PE(phycoerythrin)標記的單克隆抗體。
3. 封閉抗體:抗Fc受體抗體
4. FACS緩沖液:
1×PBS 950 ml
FCS 40 ml
10%疊氮鈉溶液 10 ml
5. 儀器緩沖液(FACS-flow):儀器廠家提供
6. FACS清潔液(FACS clean )和FACS洗凈液(FACS rinse):儀器廠家提供。
二、操作步驟
1. 單細胞懸液的制備:將1×105~1×107的細胞放入1.5 m l離心管中3000 r/min 離心5分鐘,棄上清;加入FACS緩沖液100 μl 懸浮細胞。
2. 封閉細胞表面Fc受體:在步驟1中加入Fc受體抗體0.5 μl(0.5 mg/ml),水浴3分鐘。
3. 細胞與熒光抗體結合:在步驟2中加入熒光抗體1 μl(0.5 mg/ml),水浴30分鐘。
4. 洗細胞去除游離的熒光抗體:在步驟3中加入FACS緩沖液350 μl,輕輕混勻,3000 r/min,離心5分鐘,棄上清,重復步驟(4)2次。
5. 上樣前處理:取100 μl 儀器緩沖液加入步驟(4)獲得的細胞沉淀中,輕輕混勻懸浮細胞,將細胞懸液移入FACS管中,準備進行儀器檢測和分析。
三、儀器的操作
以FACSCaliburTM(BD Biosciences)儀器為例。儀器主要分為主機部分(包括激光激活源,射流,射線探測器)和計算機部分(CELLQuest softwere)。儀器的操作分為使用前的準備、使用中的操作和使用后的清洗。
1.使用前的準備
(1)打開電源:包括系統電源和主機部分電源。
(2)檢查供液槽和廢液槽:供液槽應含足夠的儀器緩沖液,廢液槽應在上次使用后清洗干凈。
(3)使機器處于負亞狀態,才能使細胞懸液被吸入至機器的吸管口。
(4)機器處于可應用狀態時,指示燈會變成綠色。
2.使用中的操作
(1)計算機部分—使用CELLQuest程序系統軟件:
①設定所要檢測細胞的數量:一般設10 000~20 000個細胞。
②命名本次實驗:一般含使用者的姓名和實驗日期。
③打開記數部分:顯示進入的細胞數以及檢測一定量的細胞所需要的時間。
④將微機與主機連接:控制檢測時的預檢測和實際檢測。
⑤主機設定:一般是已設定好的適合測定淋巴細胞的條件,包括探測器的電壓。探測器的電壓是調空光電倍增管所能檢測熒光密度的范圍。
⑥選擇檢測的波長和表達方式(plot):如果用一種熒光抗體,一般選直方圖(histogram);如果用兩種熒光抗體,常選點狀二維圖(dot plot)或輪廓線圖(contour plot)表
CD69分子表達檢測直方圖的數值說明
b.abti-CD3(2 ng/ml)檢測結果
c.abti-CD3(10 ng/ml)檢測結果
CD4及CD8細胞點狀二維圖結果
不同的熒光物要求選擇不同的激發波長,參見下表
(2)細胞的吸入:將裝有細胞的FACS測定管放置到機器吸管孔處。
先預檢測樣品,然后進行實際檢測。可根據細胞的濃度選擇測定的速度(低、中或高)。所有的數據將自動存入微機。
3.使用后的清洗 所有樣品測定完后,要進行儀器的清洗。
(1)將裝FACS清潔液的FACS管放置機器吸管孔,高速吸入1分鐘。
(2)將裝FACS洗凈液的FACS管放置機器吸管孔,高速吸入 1分鐘。
(3)再將裝FACS清潔液的FACS管放置機器吸管孔,高速吸入5分鐘。
(4)同樣再將裝FACS洗凈液的FACS管放置機器吸管孔,高速吸入5分鐘。
(5)zui后將一裝有雙蒸水的FACS管放置機器吸管孔后,關閉機器。
(6)將廢液槽中的廢液倒掉,并清洗干凈廢液槽。
收起
注意事項
1. 減少非特異熒光染色
(1)細胞的活性和狀態:流式細胞儀不但可探測細胞表面的熒光,也可探測細胞內的熒光。因此,如果要檢測細胞表面的分子,一定要保證細胞的活性,還應盡可能保持細胞靜止,通常在4度進行操作。否則,熒光抗體進入死細胞內,會產生非特異結果。
(2)封閉抗體的應用是*的,因為大多數的免疫細胞表面都表達有Fc-R。細胞與抗體相互作用后,一定要用FACS緩沖液洗2~3次,以除去游離的抗體。
2. 單染色時以FACSzui常用,FITC標記抗體熒光比較穩定而且價格合適。
3. 如果同時要檢測兩種以上的分子,一定要選擇不同波長的熒光所標記的抗體。
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