【實驗目的】
通過實驗掌握瓊脂糖凝膠電泳鑒定DNA的原理與方法。
【實驗原理】
瓊脂糖是從海藻中提取出來的一種雜聚多糖,是由D型和L型半乳糖以α-1,3和β-1,4糖苷鍵相連形成的線狀高聚物(如下圖所示)。瓊脂糖遇冷水膨脹,溶于熱水成溶膠,冷卻后成為孔徑范圍從50nm到大于200nm的凝膠。
瓊脂糖凝膠電泳是分離、鑒定和純化DNA片段最為常用的方法之一,這種方法簡便易行。而且瓊脂糖可以灌制成各種形狀、大小和孔徑,在不同的裝置中進行電泳,如果有必要,還能夠從凝膠中回收DNA譜帶。
瓊脂糖凝膠的分離范圍較廣,選擇不同凝膠濃度和裝置,從50個堿基對到幾兆不同長度的DNA都可以實現分離。使用電場強度和電泳方向恒定的水平板瓊脂糖凝膠電泳的方法,可以很好的分離長度在50-20,000 bp 的DNA片段。
DNA在瓊脂糖凝膠中的遷移率受多種因素影響。例如DNA分子的大小;瓊脂糖的濃度;所加電壓等等。DNA片段越長,泳動速度越慢,而且泳動速度與電場強度成正比。一個給定大小的線性DNA片段,在不同濃度的瓊脂糖凝膠中遷移率不同,DNA電泳遷移率的對數與凝膠濃度成線性關系。
用低濃度的熒光染料如溴化乙啶染色后,凝膠中的DNA可以直接被檢測出來。紫外燈下可以直接檢測到20pg的雙鏈DNA。
【實驗材料】
1. 實驗器材
水平板電泳槽;灌膠模具及梳齒;電泳儀;55℃水浴;沸水浴;微量移液器
2.實驗試劑
(1)DNA樣品;DNA標準分子量標記物;瓊脂糖;1x電泳緩沖液TBE;6x樣品緩沖液
(2)溴化乙錠:水中加入溴化乙啶,攪拌數小時至溶解。將配好的10 mg/ml溴化乙啶溶液裝在棕色瓶中,室溫保存,使用時稀釋至0.5μg/ml。
緩沖溶液配制表
緩沖溶液 | 工作溶液 | 儲存溶液(每升) |
TBE | 0.5x | 5x |
0.045mol/L Tris-硼酸 | 54 g Tris 堿 | |
0.001mol/L EDTA | 27.5g 硼酸 | |
20ml 0.5mol/L EDTA (pH8.0) | ||
6x樣品緩沖液 | 0.2% 溴酚藍 | 儲存溫度4℃ |
50% (w/v) 蔗糖水液 |
【實驗操作】
1. 照廠家說明準備好灌膠模具,置于水平面上(實驗操作示意圖如下)。
2. 配制1%瓊脂糖凝膠。取250ml三角瓶,加入100ml TBE緩沖液,稱取1克瓊脂糖加入緩沖液中,沸水浴加熱至完全溶解,然后在55℃水浴中保溫。在灌膠模具中插入梳齒,將稍微冷卻的凝膠倒入灌膠模具。凝膠厚度3~5mm,避免氣泡產生。
3. 室溫放置30~45分鐘,待凝膠完全凝固后,按照廠家說明將凝膠放入水平板電泳槽。4. 在電泳槽中加入電泳緩沖液,電泳緩沖液沒過膠面1mm,拔下梳齒形成樣品池。
5. 取樣品與6X樣品緩沖液按照比例混合后,用微量移液器緩慢加入樣品池中。
6. 蓋上電泳槽并且通電,注意電源正負極,確保樣品向陽極移動。恒壓1-5V/cm(按照兩極之間距離計算),至示蹤染料溴酚藍前沿距離凝膠前端25px時,切斷電源。
7. 從電泳槽中取出凝膠,將凝膠置于0.5ug/ml溴化乙啶水溶液中,室溫下振搖染色30~45分鐘。
8. 回收染色液,自來水沖洗凝膠后,于紫外燈下觀察。
【注意事項】
1. 溴化乙啶是一種強誘變劑,并有中度毒性,取用含有這一染料的溶液時務必戴手套。
2. 紫外線對人體,尤其是眼睛有危害性。為減少紫外線照射,必須確保紫外線光源受到遮蔽。