基本方案
| 實驗方法原理 | |
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| 實驗材料 | 培養細胞(貼壁貼壁細胞在100 mm 組織培養板中約 70% 生長成片/懸浮細胞濃度 為 10^6 細胞/ml) |
| 試劑、試劑盒 | PBS 裂解緩沖液 蛋白酶抑制劑儲存液 |
| 儀器、耗材 | 微量離心機 |
| 實驗步驟 |
1. 用預冷的 PBS 洗細胞 2 次,將最后的洗液盡可能吸盡。 2. 加入 0.75 ml 裂解緩沖液重懸 2 × 107 個細胞,若是貼壁細胞必須完全覆蓋。加入蛋白酶抑制劑儲存液,使其終濃度為 1 mmol/L PMSF,100 μmol/L 苯甲脒,5 μg/ml 亮抑蛋白酶肽,5 μg/ml抑胃酶肽 A,5 μg/ml抗蛋白酶。 3. 4°C 冰浴細胞 10 min,刮離細胞并將裂解液移至標記的微量離心管中。 4. 4°C,最大速度離心 10 min,小心地將上清移至新微量離心管中,迅速進行后續實驗。
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| 注意事項 |
若用于免疫沉淀(先使用 25%~50% 的裂解物進行初試驗,再依據結果進行裂解物量的調整)和簡單純化,0.75 μl 的裂解物就足夠了。如果純化過程需經超過一次以上的層析步驟。可適當擴大裂解液的量,因為每一層析步驟僅能回收 10%~20% 的激酶活性。 |