(1) 化學定性 取粗粉末5g，用氨化的氯仿20ml 浸泡過夜，濾過，氯仿液分為2份，一份留作薄層點樣，另一份揮去氯仿，以1%鹽酸2ml溶解，放入試管中，滴加改良碘化鉍鉀試液，溶液立即產生紅棕色沉淀。 (生物堿反應)
(2) 薄層層析 樣品制備：同“化學定性”項。也可以將“化學定性”項中氯仿浸提過的藥渣，充分揮去溶劑，再以甲醇浸泡過夜，濾過，濾液濃縮至2ml，點樣于硅膠G薄層板(青島產，以0. 5%氫氧化鈉溶液鋪板，于120℃烘烤4小時以上)上。氯仿浸出部分用己烷-氯仿-甲醇(6：3：0.3)或甲醇浸出部分用氯仿 -甲醇(9 ： 1)展開，氨蒸氣飽和，展距10cm。氯仿浸出液用白屈菜堿、四氫黃連堿、白屈菜紅堿、血根堿作對照，在紫外光燈 (254～365nm)下觀察，結果，白 屈菜根提取物中4種生物堿均被檢出，而地上部分的提取物中未檢出白屈菜紅堿。甲醇提取物用小檗堿和黃連堿作對照，以改良碘化鉍鉀試劑噴霧，結果，白屈 菜根提取物中2種生物堿均被檢出，而地上部分提取物只檢出黃連堿。
(3) 紙層析 取粉末0.1g，用1%檸檬酸溶液飽和的丁醇10ml浸泡1小時，并時時搖動，過濾，濾液用圓心紙層析法以水飽和的正丁醇飽和濾紙在1小時后展開30～45分鐘，取出，干后在紫外光燈下觀察，顯黃、黃綠、綠和紅色等4種色帶。
(4) 含量測定①白屈菜堿的測定：比色法 將樣品先以硫酸的甲醇溶液提取，提取液蒸去甲醇后，酸液用氫氧化鈉溶液中和并呈堿性，以氯仿提取，再酸化提到水相，然后再以氫氧化鈉溶液堿化以氯仿提取，蒸去氯仿，殘渣溶于甲醇并調成一定體積。取一定量此溶液點于預先以丙酮-甲酰胺(7：3)處理過的濾紙上，以正丁醇-醋酸-水(4：1：5)展開，分離后白屈菜的斑點用含有金蓮橙OO(Tropaeolin OO)的pH4醋酸鹽緩沖液洗脫，然后用氯仿提取有色復合物(白屈菜堿與染料的結合物)，氯仿層酸化后測定釋放出來的染料的顏色濃度，在515nm進行比色。
（5）紫外分光光度法 取粉末用氯仿-油酸(99：1)提取，濃縮液點于硅膠G薄層板上，以氯仿-丙酮-乙酸乙酯-甲苯(2：1：1：1)展開，然后從薄層上挖取白屈菜 的斑點，用甲醇提取，并在293nm處測吸收度。
（6）碘量法 取粉末3g用70%乙醇30g室溫振搖2 小時，過濾，取25g濾液蒸去乙醇，加入10%硫酸溶液 10滴，并加水到10g，過濾，取5g濾液用10%氫氧化銨溶液1ml堿化后以25g氯仿提取15分鐘，加黃芪膠振搖，用棉花過濾，取20g濾液蒸干殘渣溶于0.1N硫酸溶液中，加熱除去氯仿，并用0.1N硫酸溶液稀釋到 10ml，取此液一定量(相當于0.5g樣品)與10%硫酸溶液2ml和0.1N碘-碘化鉀溶液2ml混合，放置2分鐘后分出沉淀，溶于甲醇25ml(Ⅰ)中，用0.01N硫代硫酸鈉標準溶液滴定(1ml 0. 01N硫代硫酸鈉≈ 0.882 5mg白屈菜堿)。(Ⅰ)的溶液也可在470nm處測定吸收度，此法較靈敏，樣品中其他生物堿不干擾。
（7）酸堿滴定法 取樣品用70%乙醇提取，濃縮后用硫酸酸化，過濾，用15%氫氧化鈉溶液堿化后以氯仿提取，提取液濃縮后加一定量0.1N鹽酸溶液，并置于水浴上加熱除去氯仿，然后用0.1N氫氧化鈉溶液滴定，以甲基紅-甲基藍混合液體為指示劑(1ml 0.1N鹽酸≈0.0353g白屈菜堿)。
（8）血根堿的含量測定(比色法)：含血根堿樣品的石油醚溶液用鹽酸提取，然后用堿堿化后以氯仿提取血根堿，加30%三氯化銻氯仿溶液形成橙色，進行比色。方法：取一定量樣品的石油醚提取液，置于分液漏斗中，加濃鹽酸10ml，充分振搖后加入10ml蒸餾水，分出酸層，移置于另一分液漏斗中，石油醚層再用含 1～2滴濃鹽酸的蒸餾水10ml提2次，合并酸液用1： 1氫氧化鈉溶液中和，冷卻后用氯仿提3次(10、10、 5ml)，合并氯仿液于小燒杯中，蒸干并在100℃烤箱中干燥，殘渣用3ml干燥氯仿定量地移到比色管中，并加入30%三氯化銻的干燥氯仿溶液2ml，采用綠色濾光片進行比色。
（9）總生物堿的測定：取樣品5g用60%乙醇提取 3次(100、100、50ml)，每次加熱15分鐘，合并提取液，減壓濃縮至約50ml，加入濃硫酸30ml、醋酸溶液 30ml、鋅粒4g，加熱約1小時，直到溶液澄清，過濾，用少量含有硫酸的熱水洗滌，冷卻后以濃氨水中和，用乙醚提取3次(至提取液與碘化汞鉀試劑不反應為止)，過濾，用無水硫酸鈉干燥，濾器用乙醚洗，濃縮后，抽空干燥除去乙醚，并干燥至恒重，準確加入氯仿50ml溶解，吸取氯仿溶液25ml，蒸干，殘渣溶于冰醋酸10ml 中，加入醋酐5ml和0.1%結晶紫指示劑3滴，用0.05 N或0.1N高氯酸冰醋酸溶液滴定到綠色為終點。總生物堿含量以白屈菜堿計 (1ml 0.05N高氯酸溶液≈ 0.017 65g白屈菜堿)。[2]