一、3H-TdR摻入法 1. IL-2依賴的CTLL用10 %FCS RPMI1640洗滌2 次,每次1000 rpm,5 min,除去原培養液中的IL-2 2. 調整活細胞數1×105 /ml 3. 96 孔平底培養板中每孔加100 μl,CTLL懸液(1×104 /孔) 4. 加入不同稀釋度標準IL-2和待測樣品 5. 37 ℃CO2孵箱,培養18~24 h 6. 每孔加3H-TdR 0.5 μci/50 μl,4-6 h 7. 用細胞收集儀收獲于玻璃纖維紙上 8. 干燥后,移入液閃瓶中,加入1 ml閃爍液,于液閃儀中測β射線的cpm值 9. 計算(舉例) 將標準IL-2不同濃度和待測樣品不同稀釋度時所獲得的cpm值作圖,縱軸采用概率座標(probit),橫座標為Log2稀釋倍數。從50 %的最高cpm值畫一橫線,k標準和待檢斜線的交點,即可計算出待檢樣品IL-2的活性單位。 如標準品50 %最大cpm值時為1 u/ml,則待測標本1∶4時為1 u/ml,原液則為4 μ/ml 二、MTT法
MTT(3-(4,5-dimcthylthioazol-2-yl)-2,5-diphenyl-tetrazolium bromide,四甲基偶氮唑鹽)可作為線粒體中琥珀酸脫氫酶的底物。當有活細胞存在時,線粒體內琥珀酸脫氫酶可將淡黃色的MTT還原成紫蘭色的甲 (Formazan),將結晶的溶解釋放,可根據所測的OD值反映活細胞的數量和活性,從而推知待檢樣品中IL-2的水平。在掌握良好的實驗條件下,MTT法的敏感性可接近3H-TdR同位素摻入法。 1. IL-2依賴的CTLL用10 %FCS RPMI1640洗滌2 次,每次1000 rpm,5 min, 除去原培養液中的IL-2 2. 調整活細胞數1~2×105 /ml 3. 96 孔平底培養板中每孔加100 μl,CTLL懸液(1~2×104 /孔) 4. 加入不同稀釋度標準IL-2和待檢樣品,100 μl/孔,每份設3個重復孔 5. CO2孵箱培養18~24 h
6. 每孔加10 μl MTT(5 mg/ml溶于PBS),4 h,37 ℃ 7. 輕輕吸出150 μl上清,加入150 μl二甲亞砜(DMSO)或酸性異丙醇(異丙醇溶于0.04 N HCl) 8. 溶解10 min,測OD值(570 nM) 展開 |