根據調亡形態學特征的檢測方法
一、普通光學顯微鏡觀察方法
1）蘇木素－伊紅染色（HE染色法）
石蠟組織切片的HE染色
1．取材組織塊，經固定后，常規石蠟包埋，4μm切片。
2．切片常規用二甲苯脫蠟，經各級乙醇至水洗：二甲苯（I）5min→二甲苯（Ⅱ）5min→100％乙醇2min→95％的乙醇1min→80％乙醇1min→75％乙醇1min→蒸餾水洗2min。
3．蘇木素染色5min，自來水沖洗。
4．鹽酸乙醇分化30s（提插數下）。
5．自來水浸泡15min或溫水（約50℃）5min。
6．置伊紅液2min。
7．常規脫水，透明，封片：95％乙醇（I）min→95％乙醇（Ⅱ）1min→100％乙醇（I）1min→100％乙醇（Ⅱ）1min→二甲苯石碳酸（3：1）1min→二甲苯（I）1min→二甲苯（Ⅱ）1min→中性樹脂封固。
2）甲基綠－派諾寧染色法
1．新鮮取材組織固定液中4℃固定3～6小時。
2．直接轉入95％乙醇脫水和無水乙醇脫水，二甲苯透明，石蠟包埋。
3．切片經二甲苯脫蠟，梯度乙醇水化至蒸餾水。
4．置染色液中室溫下染片約1h。
5．取出切片，不經水洗，用濾紙吸干多余染液。
6．插入丙酮中迅速分化。
7．轉入丙酮二甲苯（1：1）稍洗。
8．二甲苯透明2～3次。
9．中性樹膠封固。
3）Giemsa染色
1．收集細胞（1×106），PBS洗1次。
2．用細胞涂片離心機制成細胞涂片。
3．甲醇固定3～5min。
4．入Giemsa稀釋染色液15～30min，冬天在37℃溫箱中染色。
5．用磷酸鹽緩沖液分色，以鏡下控制為準。
6．涂片晾干后用中性樹膠封片。
4）瑞氏（Wright）染色
1．收集細胞（1×106），PBS洗1次。
2．用細胞涂片離心機制成細胞涂片。
3．甲醇固定3～5min。
4．用Wright液染色2min。
5．入Wright磷酸緩沖液稀釋液4～10min，然后用蒸餾水沖洗。此時如果顏色較深，可0.08％醋酸分化數秒鐘。
6．直立晾干后，用中性樹膠封固。
二、透射電子顯微鏡觀察方法
1）透射電鏡樣本的取材和固定
培養細胞的取材和固定
1．常規收集帖壁和懸浮細胞，置離心管中離心，800～1000r/min，10min。
2．用0.01mol/L PBS 5ml重懸細胞。
3．將細胞懸液吸入有瓊脂空槽的離心管中。
4．離心，2000r/min，15～20min，使細胞成團。
5．小心吸去上清，加入2.5％戊二醛固定液固定細胞團，以免細胞團散開。
6．取出離心管內的瓊脂，仔細切下尖槽內含有細胞團的瓊脂塊。
7．將含細胞的團瓊脂塊投入含戊二醛固定液的小瓶中，4℃（可長期）保存。
8．用0.1mol/L PBS緩沖液洗1次。
9．1％鋨酸后固定30～60min。
三、熒光顯微鏡觀察方法
1）吖啶橙染色法
1．制備活細胞懸液，濃度約為107/ml。
2．取95μl的細胞懸液，加5μl的吖啶橙貯存液混勻。
3．吸一滴混合液點潔凈玻片上，直接用蓋玻片封片。
4．熒光顯微鏡選用激發濾片BG 12或BV等，阻斷濾片用515nm或SP3。
2）Hoechst33258染色法
1．原代細胞培養，細胞學涂片或細胞甩片機制備的單細胞片。
2．細胞固定液4℃固定5min。
3．蒸餾水稍洗后，點加Hoechst33258染色液，10min。
4．蒸餾水洗片后，用濾紙沾去多余液體。
5．封片劑封片后熒光顯微鏡觀察。
3）Hoechst33342染色法
1．將Hoechst33342加入培養的細胞中，終濃度為10μg/ml 37℃孵育30min。
2．4％的多聚甲醛和培養液以1：3混合，使多聚甲醛的濃度為1％，固定細胞5～10min。
3．固定好后，將細胞懸液涂在載玻片加蓋玻片。
4．熒光顯微鏡激發濾片選用UV激發濾片，阻斷濾片為400～500nm。
以上是先將細胞染色后再行固定觀察的方法，也可先固定后染色：
1．收集（0.5～3.0）×106個細胞，500～1000r/min，離心5min去上清。
2．PBS洗1次，500～1000r/min，離心5min去PBS。
3．用3％多聚甲醛50μl重懸細胞，室溫下固定10min。
4．PBS洗1次，500～1000r/min離心5min去PBS。
5．用15μl的Hoechst33258或33342重懸細胞，終濃度為16μg/ml，孵育15min。
6．取10μl放在玻片上，熒光顯微鏡下觀察，可數500個細胞，計算調亡率。