（三）核移植
1. 顯微注射器的準備：
每次手術前應向顯微注射器的整個管道系統灌入手術液或雙蒸水，檢查管道的各銜接處有否漏氣。管內只要有一極小的氣泡，注射器的調節就失靈。同時應注意選擇彈簧上彈性較靈敏的部位以便操作準確（圖17.2，17.3，17.4）。
2. 微型吸管的制備：
吸管最好用軟質玻璃管。制作前，先將玻管用洗液洗凈，再用蒸餾水徹底將酸洗去。這樣可使拉出的微吸管內部潔凈，不致影響細胞核的吸入和射出。將玻管拉成口徑1mm的細管，然后在微火焰上，再拉成微吸管，管徑在10-20微米之間（圖17.5，17.6）。
3. 吸細胞核：
吸核的方法不是將微吸管頭刺入供體細胞內吸取細胞核，而是利用顯微操縱臺通過輕輕地來回轉動千分尺外徑，將一個細胞慢慢地吸入微吸管。必須注意微吸管的內徑要比細胞小，這樣能使被吸入的細胞由于吸力的作用而破裂，結果可以依靠目測，將細胞核和包在它周圍的一部分細胞質一起吸入管內，避免細胞核直接與液體接觸，以免受損。還應調節使供體細胞盡量靠近管口，避免注核時帶入較多的手術液。
4. 注核：
將吸有供體細胞核的微吸管在離動物極45度左右的地方刺入動物半球的中心，再稍微向上提一下管口，然后輕輕地推動微量注射器，把管內的細胞核連同周圍的細胞質慢慢地注入卵內。如果注射速度太快，注入卵內的壓力過大，則會使卵子破裂，導致實驗失敗。
一般從首次去膠膜到注完15個左右的核，需2-2.5小時，時間過長，將會影響移核卵的發育。
5. 培養觀察：
移核后的卵子轉入1/10 Holtfreter 液中，置25℃恒溫箱中培養。及時觀察卵子的發育并做好記錄。
6. 用同批卵按常規人工授精的方法獲得受精卵，置培養皿中在同等溫度條件下培養，以便與移核卵作對比觀察。
二、哺乳動物的細胞核移植
1. 取卵：
取卵的方法與實驗十六相同。
2. 去核卵的制作：
用白色小鼠的受精卵作受體，在有相差干涉裝置的顯微鏡下，將預先備好的移核針管頭端，借助顯微操作器刺入受精卵的透明帶，讓針頭僅穿過透明帶而不刺破卵子的質膜。再用針口對準雄核，隔著質膜將其吸入針管內。然后將針口對準雌核，以同樣的方法將雌、雄原核吸至針管前端，隨即慢慢拔出針管。此時可見到卵子質膜彈性很大，在管口與透明帶之間質膜被拉成細絲，然后斷開，形成只有細胞質的去核卵和在針管內有兩個原核和少量細胞質，外有質膜包裹的兩個部分。該去核卵即作受體用（圖17.7）。
3. 細胞核移植：
用同法將作供體的黑小鼠受精卵的雌、雄原核吸入針管內，然后吸入少許仙臺病毒（Inactivatied Sendai
Viras），再將上述針管移至去核卵，讓管口穿過透明帶原有的小孔進入卵周隙，此時輕輕轉動注射器，使外有質膜包裹的雌、雄原核和仙臺病毒一起進入受體卵的透明帶與質膜之間的卵周隙，然后把針管緩緩抽出即可（圖17.8）。如繼續觀察，能見到在病毒的作用下，移入細胞核所帶的質膜與去核的質膜接觸處，質膜慢慢溶化消失，雌、雄原核進入受體卵的融合過程。該移核卵子，實際是核質雜交。如果操作成功，在二氧化碳培養箱內培養，
90%以上的卵子可發育至胚泡期，經過胚胎移
植可獲得核移植的核質雜交小鼠。
在核移植的全過程中，每一步驟均需嚴格操作，盡量減少對細胞膜、質和核的損傷，所用的器皿也需嚴格消毒，防止污染，以提高各個步驟的成活率。
實驗材料
1.實驗材料：
蛙受精卵，蛙囊胚晚期或原腸早期胚胎，昆明白小鼠，黑小鼠（C57BL―6）.
2.實驗儀器：
顯微操作器、顯微注射器、拉針器、酒精噴燈、虹膜剪刀、尖頭鐘表鑷、
內徑0.5cm，0.3cm玻璃管、1mm玻璃毛細管、玻璃針、培養皿、彎頭吸管、毛細吸管、微吸管、溫箱、雙目解剖鏡、顯微鏡。
3.實驗藥品：
手術液：即 Holtfreter液，需煮沸消毒
分離液：
NaCl 0.35g
KCl 0.005g
雙蒸水 100ml
待以上混合液煮沸消毒冷卻后加入
EDTA(乙二胺四乙酸)18.6mg
NaHCO3 0.02g
Ringer液
70%酒精
2%瓊脂