例7 鼠肝主質細胞的多倍體級浮選分離 l 設備及樣品：同例（5） l 轉速1350rpm（～210g） l 溫度4℃ l 初始充樣流速12ml/min，直至細胞充滿離心室 l 分別用流速19，32，41（ml/min）收集I,II,III 細胞，收集量分別為100ml，150ml 及100ml l 已收集細胞儲存于4℃ l 停止輸液后轉頭停轉，從離心室收集沉淀并收集混合室樣品 l 用低速低溫離心機甩平轉頭分別將收集液離心沉淀，1000×g，10 分鐘，將沉淀與3ml 浮選介質混合制成倍體細胞懸液，4℃保存。 l 結果：細胞數量與活性分析
| 成分 | 流量ml/min | 細胞數量×106 | 活性（％） | 組成 |
| 原液 | 137.8 | 84 | 2n，4n，8n，16n 及少量細胞聚集團及細胞碎片 | |
| I | 19 | 39.8 | 72 | 2n，4n, 少量細胞碎片 |
| II | 32 | 54.7 | 85 | 4n（90％） |
| III | 41 | 15.5 | 83 | 4n，8n，細胞聚集團 |
| 沉淀 | 17.1 | 82 | 同原液數據 | |
| 混合室 | 5.2 | 85 | 同原液數據 | |
| 總數 | 127.0（92％） |
例8 肝的Kupffer （星形細胞）及endothelial( 內皮)細胞純化 l 浮選設備：同上述例 l 浮選用介質：GBSS l 各種染色介質（參考各節） l 肝竇狀細胞（Sinusoidal）懸液 l 分離步驟
| i. | 用不連續Nycodenz 梯度制備鼠肝Sinusoidal 細胞懸液（參見本文前例） |
| ii. | 安裝離心浮選系統（Hitachi 或Beckman） |
| iii. | 標準離心室：3,250rpm，4℃ |
| iv. | 初始流量13.5ml/min 注入1～5×108個細胞懸液 |
| v. | 在流量分別為18，32，48ml/min 時分別收集100ml，150ml，150ml |
| 收集液中含有白細胞（L）、星形細胞（K）、內皮細胞（E）及主質細胞（P），收集 | |
| 液保存在4℃。 | |
| vi. | 離心后收集在浮選室中的細胞 |
| vii. | 各種收集液離心沉淀：450g×10 分，沉淀分別混懸于3mlGBSS 中 |
viii. 結果如下表：
| 成份 | 細胞主要類型 | 細胞總量×106 | 活性 | 染色細胞比例％ | 組成％ | ||||
| ％ | P1 | E1 | P | L | E | K | |||
| 初始細胞液 | Sinusoidal | 167.4 | 87 | 24.7 | 86.8 | 0.6 | 13.2 | 61.5 | 24.7 |
| I 收集液（100ml） | L | 19.9 | 80 | 3.0 | 28.6 | / | 71.4 | 25.6 | 3 |
| II 收集液（150ml） | E | 82.5 | 95 | 9.0 | 89.2 | / | 10.8 | 80.2 | 9 |
| III 收集液（150ml） | K | 34.7 | 97 | 83.5 | 95.1 | / | 4.9 | 11.6 | 83.5 |
| 沉淀 | 細胞聚集團 | 9.8 | 95 | 34.5 | 96 | 16.0 | 4.0 | 44.6 | 35.4 |
注： l 表成染色比例中 P1：Peroxidase 過氧化物，E1：Esterrase（酯酶） l Sinusoidal 細胞制備方法參見前述內容。 例9 鼠肝儲脂細胞的離心浮選純化（文獻14）
| i. | 離心浮選設備（同上） |
| ii. | 轉速3,250rpm，4℃，流量16ml/min |
| iii. | Sinusoidal 細胞制備參照前述二階不連續梯度離心法。 |
| iv. | 加樣：5～50×107 個細胞注入混合室 |
| v. | 用16ml/min 及18ml/min 分別收集二次，最后收集在離心室中剩下的細胞液 |
| vi. | 以上三種收集液分別450g×10 分鐘離心，收集沉淀后分別用2mlGBSS 混成 |
| 懸液 |
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