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  • 發布時間:2019-10-27 11:38 原文鏈接: 熒光定量PCR詳細流程和問題解析

    選擇單通道實驗還是多通道實驗?

    這是要根據實驗需要來選擇的,如果有一個、兩個或是三個基因要進行比較,并用看家基因進行對照,可以考慮選擇多通道實驗。多通道實驗的好處是可以消除樣本加樣的誤差。

    但要克服的困難也比較多,一是條件的優化比較麻煩,即多種PCR反應以及探針要在同一個反應條件下進行,并且效率都要比較高,另一個困難是要求相互之間沒有干擾,因為干擾會影響到實驗結果。

    還有一個困難是當一個基因的模板數顯著大于其他基因時,因為共用核苷酸等資源的原因,會讓模板數少的基因的定量值變小或變為零。因此一般兩通道的實驗比較多些,即一個基因進行多樣本比較,用看家基因進行對照。

    可以看出,如果單通道實驗可以解決問題,就不要選擇多通道實驗了。三個以上的基因進行比較時就最好用單通道。因為一般的儀器最多也只有四個通道,就是有更多的通道,實驗條件的優化也是足夠麻煩了。

    雙通道實驗時如何克服反應條件、干擾以及模板數差別很大等困難?

    對于反應條件的優化,可通過兩個單獨實驗的標準曲線來優化,主要是復性溫度,可用PCR儀的溫度梯度功能來選擇,然后找到一個合適的復性溫度。對于如何確定是否存在相互干擾,則要通過兩個獨立的單通道實驗與雙通道實驗的結果進行比較,如果差別不大,則表明沒有干擾。

    至于模板數差別很大的問題,可以通過降低引物濃度的方法來實現,即primer limited,在一般的PCR反應中,引物的濃度是足夠高的,基本上可以將反應液中的核苷酸全部消耗盡,在優化引物濃度時,用不同的引物濃度進行實驗,找到不影響反應的CPhone值的最低引物濃度。

    這樣在實際反應中,模板數高的基因在引物耗盡后,反應液中仍然有足夠的核苷酸等用于另一個基因的反應。


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