實驗方法原理 在血漿中加入適量的亞硫酸鈉；使纖維蛋白原形成沉淀，其余的蛋白質均尚在溶液中．將沉淀溶于氯化鈉溶液中，雙縮脲測定蛋白質的量．
實驗步驟
一、實驗試劑：
1.12.5%亞硫酸鈉溶液：稱取無水亞硫酸鈉（A．R或GP〕125g溶于蒸餾水中并用蒸餾水稀釋至1000m1．
2. 9g／L NaCL 溶液
3. 雙縮脲試劑
4. 標準白蛋白血清
二、操作方法：
在15×100mm試管內加入血漿0.5ml，再加水125g／L亞硫酸鈉溶液混勻，置于37℃水溶15min或更長時間，取出、離心、傾棄上清液，沉淀再以125g／L亞硫酸鈉溶液洗三個多小時．洗時先同小量亞硫酸鈉使它分散均勻．離心應傾棄上請液，將試管置于濾紙上，淋干管內液體于管內加入9g／L NaCL 1.0ml，充分混臺使沉淀溶解即為“測定管”，在另一試管中用0.lm1刻度吸管準確加標準血清0.05m1并加入9g／L NaCL溶波0.95m1，混合作為標準試管,在另一試管中加入9g／L 氯化鈉溶液1ml作為空白管．
在空白管標準及測定管內各加雙縮脲試劑，混合后的室溫放置30min540nm波長進行比色以空白管校正吸光度到零點，讀取各管內吸光度讀數。
三、計算：
測定管吸光度／標準管吸光度×O.1×標準血清蛋白濃度＝纖維蛋白原g／L血漿
注意事項
1. 亞硫酸鈉與血漿作用，有時10min尚不能使纖維蛋白析出，可適應延長時間．
2. 以亞硫酸鈉先洗滌沉淀是為了支除纖維蛋白以外的蛋白質，所以在洗滌時須將沉淀均勻分散．
3. 在洗滌沉淀時，如纖維蛋白原被亞硫酸鈉溶液全部或部分溶解可再將試管置37℃水浴，以待纖維蛋白原析出．
選擇標準液時不能任選未知性能的蛋白作為血清蛋白質的標準液。