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  • 發布時間:2020-09-07 23:04 原文鏈接: 血清γ球蛋白的分離純化與鑒定(凝膠層析法)2

    (5)20%磺基水楊酸溶液

    (6)奈氏(Nessler)試劑應用液

    貯存液;稱取碘化鉀(KI)7.58g于250ml三角燒瓶中,用蒸餾水5ml溶解,再加入碘(I2) 5.5g溶解,加7~7.5gHg用力振搖10min(此時產生高熱,須冷卻),直至棕紅色的碘轉變成帶綠色的碘化汞鉀液為止,過濾上清液傾入100ml容量瓶,洗滌沉淀,洗滌液一并倒入容量瓶內,用蒸餾水稀釋至100ml。

    應用液:取貯存液75ml加10%NaOH 350ml,加水至500mL。

    (7)0.9%氯化鈉溶液

    (8)乙酸纖維素薄膜電泳有關試劑(見實驗29)

    易生物儀器庫:http://www.ebioe.com/yp/product-list-42.html
    易生物試劑庫:http://www.ebioe.com/yp/product-list-43.html

    2.器材

    (1)人血清。

    (2)層析柱。

    (3)長滴管。

    (4)醋酸纖維素薄膜。

    操作方法

    1.鹽析――中性鹽沉淀

    取正常人血清2.0ml于小試管中,加0.9%氯化鈉溶液2.0ml,邊攪拌混勻邊緩慢滴加飽和硫酸銨溶液乙4.0ml,混勻后于室溫中放置10min,3000r/min離心10min。小心傾去含有清蛋白的上清液,重復洗滌一次,于沉淀中加入0.0175mol/L磷酸鹽緩沖液(pH6.3)0.5~1.Oml使之溶解。此液即為粗提的γ-球蛋白溶液。

    2.脫鹽――凝膠柱層析

    (1)裝柱:洗凈的層析柱保持垂直位置,關閉出口,柱內留下約2.0ml洗脫液。一次性將疑膠從塑料接口加入層析柱內,打開柱底部出口,調節流速0.3ml/min。凝腔隨柱內溶液慢慢流下而均勻沉降到層析柱底部,最后使凝膠床達20厘米高,床面上保持有洗脫液,操作過程中注意不能讓凝膠床表面露出液面并防止層析床內出現“紋路”。在凝膠表面可蓋一園形濾紙,以免加入液體時沖起膠粒。

    (2)上樣與洗脫:可以在凝膠表面上加圓形尼龍濾布或濾紙使表面平整,小心控制凝膠柱下端活塞,使柱上的緩沖液面剛好下降至凝膠床表面,關緊下端出口,用長滴管吸取鹽析球蛋白溶液,小心緩慢加到凝膠床表面。打開下端出口,將流速控制在0.25ml/min使樣品進入凝膠床內。關閉出口,小心加入少量0.0175mol/L磷酸鹽緩沖液(pH6.3)洗柱內壁。打開下端出口,待緩沖液進入凝膠床后再加少量緩沖液。如此重復三次,以洗凈內壁上的樣品溶液。然后可加入適量緩沖液開始洗脫。

    加樣開始應立即收集洗脫液。洗脫時接通蠕動泵,流速為0.5ml/min,用部分收集器收集,每管1ml。

    (3)洗脫液中NH4+與蛋白質的檢查:取比色板兩個(其中一個為黑色背底),按洗脫液的順序每管取一滴,分別滴入比色板中,前者加20%磺基水楊酸溶液2滴,出現白色混濁或沉淀即示有蛋白質析出,由此可估計蛋白質在洗脫各管中的分布及濃度;于另一比色板中,加人奈氏試劑應用液l滴,以觀察NH4+出現的情況。

    合并球蛋白含量高的各管,混勻。除留少量作電泳鑒定外,其余用DEAE纖維素陰離子交換柱進一步純化。
    3.純化――DEAE纖維素陰離子交換層析

    用DEAE纖維素裝柱約8-10cm高度,并用0.0175mol/L磷酸鹽緩沖液(pH6.3)平衡,然后將脫鹽后的球蛋白溶液緩慢加于DEAE纖維素陰離子交換柱上,用同一緩沖液洗脫、分管收集。用20%磺基水楊酸溶液檢查蛋白質分布情況。(裝柱、上樣、洗脫,收集及蛋白質檢查等操作步驟同凝膠層析)。

    4.濃縮

    經DEAE纖維素陰離于交換柱純化的γ-球蛋白液往往濃度較低。為便于鑒定,常需濃縮。收集較濃的純化的γ-球蛋白溶液2m1,按每ml加0.2~ 0.25gSephadex G一25干膠,搖動2~3min, 3000r/min 離心5min。上清液即為濃縮的γ-球蛋白溶液。

    5.鑒定――乙酸纖維素薄膜電泳

    取乙酸纖維素薄膜2條,分別將血清、脫鹽后的球蛋白、DEAE纖維素陰離子交換柱純化的γ-球蛋白液等樣品點上。然后參閱實驗二十九:乙酸纖維薄膜電泳法進行電泳分離、染色。比較電泳結果。

    注意事項

    1.凝膠及DEAE纖維處理期間,必須小心用傾瀉法除去細小顆粒。這樣可使凝膠及纖維素顆粒大小均勻,流速穩定,分離效果好。

    2.裝柱是層析操作中最重要的一步。為使柱床裝得均勻,務必做到凝膠懸液或DEAE纖維素混懸液不稀不厚,一般濃度為l:l,進樣及洗脫時切勿使床面暴露在空氣中,不然柱床會出現氣泡或分層現象;加樣時必須均勻,切勿攪動床面,否則均會影響分離效果。

    3.本法是利用γ-球蛋白的等電點與α-、β-球蛋白不同,用離子交換層析法進行分離的。因此層析過程中用的緩沖液pH要求精確。

    4.電泳注意事項見實驗二十九。

    5.凝膠貯存:凝膠使用后如短期不用,為防止凝膠發霉可加防腐劑如0.02%疊氮鈉。保存于4℃冰箱內。若長期不用,應脫水干燥保存。脫水方法:將膨脹凝膠用水洗凈。用多孔漏斗抽干后,逐次更換由稀到濃的乙醇溶液浸泡若干時間,最后一次用95%乙醇溶液浸泡脫水,然后用多孔漏斗抽干后,于60~80℃烘干貯存。

    6.離子交換劑的再生和保存;離子交換劑的價格較貴,每次用后只需再生處理便能反復使用多次。處理方法是:交替用酸、堿處理,最后用水洗至接近中性。陽離子交換劑最后為Na型,陰離子以Cl型是最穩定型,故陰離子交換劑處理順序為堿一水一酸一水。由于上述交換劑都是糖鏈結構。容易水解破壞,因此須避免強酸、強堿長時間浸泡和高溫處理,一般纖維素浸泡時間為3-4h。

    離子交換劑容易長霉引起變質,不用時,需洗滌干凈,加防腐劑置冰箱內保存。常用0.02%疊氮鈉防腐。疊氮鈉遇酸放出有毒氣體,也是劇毒與易爆的危險品。使用時要加倍小心。

    除用凝膠層析法去除無機鹽類外,最常用的去鹽法就是透析。細的透析袋效率高,所需時間短。將透析袋一端折疊,用橡皮筋結扎,試驗是否逸漏,然后倒入待透析的蛋白質溶液。勿裝太滿,將袋的上端也結扎好,即可進行透析。開始可用流動的自來水,待大部分鹽被透析出后,再改為生理鹽水、緩沖液或蒸餾水。透析最好在較低的溫度下,并在磁力攪拌器上進行。此法簡單,易操作,儀器及試劑要求不高,但不如凝膠層析法效率高。

    濃縮γ-球蛋白粗提液除上述方法外還可用透析袋濃縮。將待濃縮的蛋白質溶液放入較細的透析袋中,置入搪瓷盤內。透析袋周圍可撒上聚乙二醇6000(PEG6000),或聚乙烯吡咯酮,或蔗糖。以上物質在使用后(吸了大量水)都可以通過加溫及吹風而回收;將裝有蛋白質溶液的透析袋懸掛起來,用電風扇高速吹風(10℃以下),也可達到濃縮目的,以上兩法雖不如 SephadexG一25干膠快,但價格較便宜,方法也不煩瑣。


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