聚合酶鏈式反應(polymerase chain reaction,PCR)簡稱PCR技術,是近年來發展起來的一種體外擴增特異DNA片段的技術,由于其可使特定DNA片段在數量上呈指數增加至可檢測范圍,故成為基因診斷的重要方法。在PCR基礎上衍生的一些擴增技術已用于基因突變的診斷。目前單基因疾病PGD所用的方法主要是基于PCR技術通過檢測單細胞靶基因的數目及結構有無異常加以診斷。
(一)聚合酶鏈式反應
PCR實際上是在模板DNA、引物和4種脫氧核糖核苷酸存在的條件下依賴于DNA聚合酶的酶促合成反應。基本原理是:用一對寡核苷酸鏈做引物,引導DNA聚合酶在引物識別位點之間兩條互補鏈上進行DNA合成,經過模板變性、退火及延伸三步為一個循環,每一循環的產物可以作為下一個循環的模板,多次循環可使特定DNA片段在數量上呈指數增加至2×l0(6一7)拷貝。
單細胞PCR無需抽提DNA,經過變性前處理步驟后,即進行PCR循環反應。與經典PCR相比,其優點是無需制備DNA,節省時間,從獲得樣本、PCR反應到出結果只需幾個小時左右。但由于單細胞PCR的模板量極低,僅1–2拷貝,故PCR體系必須具備下列條件:①對模板擴增的忠實性好;②方法穩定;③無非特異性擴增;④擴增的靈敏度高。目前用于PGD的PCR方法主要有以下幾種:
1.巢式PCR 由于單細胞中可檢測的僅l一2個拷貝的基因序列。為了既不影響特異性又獲得較大的敏感性,巢式引物被應用。巢式PCR設置二步PCR,只有初級PCR中特異的擴增片段才可能被二級引物擴增,可減少引物與模板非特異性位點的復性、引物二聚體的形成以及非特異背景產物的產生,從而提高了擴增特異性,而且增加了zui終產物量。
2.多重PCR 如果與疾病相關的基因十分龐大,如杜氏肌營養不良癥(DMD),有2 OOO多kb長。這些基因常多處發生缺失或突變,而且這些改變發生在相鄰十至數百個kb的距離,超出了PCR技術所能擴增的有效長度,對此,可采用多重PCR,既在同一試管中加人多對引物,擴增同一模板的幾個區域。目前報道多重PCR反應zui多可同時擴增12條區帶。
3.熒光PCR 指熒光標記的寡核苷酸引物。PCR產物用激光分析系統進行分析,從產物大小到核苷酸序列都能夠被準確分析。由于不同的熒光分子在激光激發下有不同波長,在片段分析結構系統中,相同大小的不同產物可以被區分開。其敏感性優于普通PCR千倍。準確性可達l一2bp。對于單細胞35–4O個循環就可以產生足夠量的產物,不僅減少了散在的、非特異的污染,而且縮短診斷時間。現該方法已廣泛用于PGD。
4.熒光定量PCR 該技術融匯了PCR和DNA探針雜交技術的優點,反應體系中,不僅有兩條普通的引物,還有一條熒光標記探針。這條探針的5’和3’端分別標記了熒光報告基團(R)和熒光淬滅基團(Q)。當探針保持完整時,無熒光發出。PCR開始后,隨著鏈的延伸,Taq酶將熒光探針切斷,釋放出熒光信號,且信號的強弱與PCR的產物數量成正比,檢測出前者可計算出后者,從而獲取DNA模板的準確結果。該技術在完全閉管的情況下進行,無需凝膠電泳,通過特殊探頭直接探測PCR過程中熒光信號的變化,解決了常規PCR不能定量及擴增產物污染而導致的假陽性、操作復雜等問題,減少污染的可能性,提高了診斷的效率。
5.原位PCR 此技術由HaSSe等于1990年建立,即在固定于同一載玻片上的同一個單細胞上,先用PCR原位擴增,再用FISt{檢測,目前PGD中應用該方法,PCR的有效率為65%,FISI–I達85%。遺憾的是ADO較常規PCR高。但這種新方法有效的把原位雜交技術的細胞定位能力與PCR擴增的所有潛在敏感性結合起來,相信隨著引物設計及熒光PCR與原位PCR有效的結合,其不足會得到克服,該方法也許會成為PGD的未來。
6.免疫PCR 是PCR法與酶聯免疫吸附試驗(ELISA)法的融合技術,利用了PCR的大量擴增能力和抗原抗體反應的特異性。其原理是將目的基因的擴增產物用生物素標記,檢測突變的特異性探針用地高辛標記,二者經變性退火處理后加到含抗生物素的酶標板內,通過顯色來鑒定突變是否存在。根據顯色深淺可做定量分析。該法已用于囊性纖維病基因突變的檢測。
7.等位基因特異性擴增 在設計引物時,根據已知突變位點的特征,在引物3’端或中間設計一錯配堿基,使之僅能與突變型或野生型基因互補,而只擴增相對應的突變型或野生型基因。主要用于點突變導致的遺傳病的檢測。其優點是只需一步PCR,而無需電泳和標記,擺脫了分子生物學方法中必經電泳的現象。在相互競爭的突變型和野生型引物中,分別采用不同熒光染料標記擴增的DNA,可直接對擴增產物進行判讀。另外使用具有特定酶切位點的內嵌引物,也可提高產物特異性和產量,DNA擴增后用酶切割,由酶切產物可明確是否有基因突變,該法已應用于單個精子的DNA分析。
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