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  • 發布時間:2021-06-12 15:43 原文鏈接: 貧血患者外周血液標本實驗診斷思路實驗指導

    一、紅細胞檢查
     紅細胞計數(目視計數法)
    要求】熟悉血細胞計數方法,掌握紅細胞計數參考值及臨床意義。
    原理】 用紅細胞稀釋液將定量血液稀釋一定倍數,置于血細胞計數板內,于顯微鏡下計數一定容積內的紅細胞數,然后再計算出每升血液內的紅細胞數。
    試劑
    紅細胞稀釋液 [赫姆(Hayem)稀釋液]
    氯化鈉1.0g  硫酸鈉(Na2 SO4·10H2O) 5.0g (或無水硫酸鈉2.5g)
    氯化高汞0.5g  蒸餾水加至200.0ml,過濾后備用。
    器材與儀器
    1.試管、玻棒、2ml玻璃吸管、顯微鏡。
    2.一次性微量吸管:上有10μl及20μl的刻度線。
    3.血細胞計數板:血細胞計數板中央有兩個刻度平臺(即血細胞計數池),每個平臺劃分為9個大方格,每個大方格長寬各為1mm,其面積為1mm2,加蓋玻片后的深度為0.1mm,故每一大方格的容積為0.1mm3(0.1μl)。四角的四個大方格等分為16個中方格,作為白細胞計數用(見圖1); 中央一大方格用雙線等分為25個中方格,每個中方格又等分為16個小方格,作為紅細胞和血小板計數之用(見圖1-2)。
    操作
    1.取試管一支,準確加入紅細胞稀釋液2ml。
    2.消毒皮膚,用采血針刺破皮膚,使血液自動流出,拭去第一滴血,用一次性微量吸管準確取血10μl。
    3.擦去管尖外面多余的血液,將吸管插入稀釋液底部,輕輕將血全部排出,然后吸取其上清液清洗吸管內殘余血液2~3次。
    4.混勻后用玻棒沾取紅細胞懸液,充入血細胞計數池內,注意充池的液量要適宜,使之恰好充滿,無氣泡及多余液體溢出。靜置2~3min,待紅細胞下沉后進行計數。
    5.將血細胞計數板置于顯微鏡下,用低倍鏡觀察計數池內紅細胞分布狀況是否均勻,如紅細胞分布均勻,即可用高倍鏡進行計數。計數中央大方格中的四個角上和中心的中方格(共5個中方格)的紅細胞。為準確計數,對于壓在線上的細胞計數可采用壓在相鄰的兩側線者計入(如左側及上側),壓在另相鄰的兩側(如右側及下側)線者不計數的原則進行計數(即數上不數下,數左不數右)。
    6.計算:將5個中方格所得的紅細胞數的總和(N)乘以10,000即為每微升(μl)血液內的紅細胞數,再乘106換算為每升(L)血液內的紅細胞數。
    7.計數完畢后,用清水將計數盤和蓋玻片沖洗干凈,待干后備用。
    注意事項】
    1.顯微鏡物鏡接近計數板時應注意,勿損壞計數板及鏡頭。
    2.計數時進入顯微鏡的光線要適中,否則不易找到方格。計數池內的細胞分布要均勻,各中方格的細胞相差不應超過±10%,否則重新計數。
    3.計數不準確的常見原因:
    (1)采血不符合要求,如局部皮膚水腫、炎癥、穿刺過淺、過度擠壓等。
    (2)稀釋液量不準,特別在夏季,稀釋液放置過久,水份蒸發。
    (3)操作太慢,血液凝固。
    (4)如微量吸管內壁沾有白細胞稀釋液,會使紅細胞破壞,故應先做紅細胞計數。
    (5)紅細胞懸液混勻不充分。
    (6)計數池充池不均勻,或充滿后移動蓋玻片。
    (7)計數時對壓在線上的紅細胞,未按壓線紅細胞計數原則進行計數,造成遺漏或重復。
    (8) 當白細胞極度增多時,將使紅細胞計數結果假性偏高,故應對紅細胞計數結果進行校正。校正方法:校正后紅細胞計數結果=校正前紅細胞計數結果-白細胞計數結果
    參考值】 成年男性(4.0~5.5)×1012/L
          成年女性(3.5~5.0)×1012/L
          新生兒  (6.0~7.0)×1012/L
    臨床意義
    1.紅細胞的增多
    (1)相對性增多  如劇烈嘔吐、嚴重腹瀉、大面積燒傷、大汗、多尿等,使體內水分喪失過多,導致血液濃縮。
    (2)絕對性增多  多由于缺氧而致紅細胞代償增多,紅細胞增多的程度與缺氧程度成正比。少數病例是由造血系統疾病所致。
    1)生理性增多: 胎兒、新生兒、高原居民。當劇烈的體力勞動和體育活動后、情緒激動時,紅細胞也可一時性增多。
    2)病理性增多: 見于慢性心肺功能不全疾患如肺氣腫、肺原性心臟病及某些紫紺型先天性心臟病等。此外真性紅細胞增多癥時,紅細胞增多可達(7.010.0)×1012/L。
    2.紅細胞的減少
    (1)生理性減少  見于妊娠中、晚期和肝硬化時,血容量增加血液稀釋,紅細胞相對減少。
    (2)病理性減少  是指血中紅細胞絕對數量減少。見于造血功能障礙、造血原料供應不足,紅細胞丟失和破壞過多等原因引起的各種貧血。 

      血紅蛋白測定(氰化高鐵血紅蛋白測定法)
    要求】 熟悉氰化高鐵血紅蛋白測定方法,掌握血紅蛋白測定的參考值和臨床意義。
    原理】 高鐵氰化鉀能使血紅蛋白中的二價鐵氧化成三價鐵,形成高鐵血紅蛋白。后者再與氰離子結合,形成穩定的氰化高鐵血紅蛋白(hemoglobin  cyanide,HiCN)。氰化高鐵血紅蛋白的最大吸收峰在波長540nm,可用標準的高精度的分光光度計定量測定,其吸光度與血紅蛋白濃度成比例。
    試劑
    氰化高鐵血紅蛋白(HiCN)轉化液:
    氰化鉀(KCN) 0.05g , 高鐵氰化鉀[K3Fe(CN)6] 0.20g,
    非離子表面活性劑(Triton X-100)0.5~1.0ml , 無水磷酸二氫鉀(KH2PO4)0.14g
    蒸餾水加至1000ml,糾正PH至7.0~7.4。
    血紅蛋白轉化液均為淡黃色透明溶液,配成后用濾紙過濾,置棕色瓶中,在室溫中可保存數月,在冰箱中穩定時間更長,但勿使結冰。該液以H2O為空白,于540nm測其吸光度應<0.001。
    【器材與儀器】試管、刻度吸管、微量吸管、分光光度計。
    【操作】
    1.血紅蛋白轉化:取HiCN轉化液5ml,用微量吸管取末梢血20μl,加入HiCN轉化液中,充分混勻,靜置5min,使充分反應。
    2.比色:用分光光度計比色,波長540nm,光徑1.0cm,以轉化液或蒸餾水為空白,測定樣本吸光度(A)。
    3.如果使用符合WHO標準的分光光度計,可根據樣本吸光度(A)直接計算血紅蛋白濃度。
    4.當使用的分光光度計不符合WHO標準時,可先使用已知濃度的血紅蛋白標準液制作HiCN的標準曲線,然后根據樣本吸光度在標準曲線上查取血紅蛋白濃度。
    【注意事項】
    1.使用光電比色計之前須校正儀器。
    2.采血用的血紅蛋白吸管20μl的準確性應在±1%以內,5.0ml移液管的準確性在± 0.5%以內。當使用標準曲線時,應定期對標準曲線進行校正。
    3.樣品在讀數前應清晰,如發生混濁,可能有以下幾種情況:
    (1)血中白細胞過多,可離心后取上清比色。
    (2)血中有異常球蛋白,可在溶液中加0.1g碳酸鉀。
    (3)有硫化血紅蛋白或血紅蛋白C時,則可用蒸餾水按1∶1稀釋,結果乘以2即可。
    (4)氰化試劑是劇毒品,在配試劑時要嚴格按劇毒品操作。如發現變綠、變混則不能使用,pH低于7.0時應進行調整。
    4.血紅蛋白轉化液不能貯存在塑料瓶中,否則CN-濃度下降,致使結果偏低。
    【參考值】
    成年男性  120~160g/L

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