基因工程小鼠基因型PCR鑒定的基本原則是利用基因工程小鼠基因組與野生型小鼠基因組的序列差異，以小鼠基因組DNA為模板進行PCR，并以凝膠電泳比對比不同基因型特異產物的大小，根據條帶大小來區分小鼠的不同基因型。上期我們講述了PCR反應體系的選擇，今天我們就開始學習PCR膠濃度、電泳電壓及時間的選擇。
PCR如何選擇膠濃度？
根據PCR條帶大小來確定，一般1kb以內用2.0~2.5%的TBE膠（0.5X TBE 緩沖液來配置）；1kb以上用1.0~1.2%的TAE膠（1X TAE 緩沖液來配置）；
5X TBE緩沖液母液的配制
1. 分別用電子天平稱取下列物品放入燒杯中。
2. 加800mL ddH2O使試劑溶解，倒入2L瓶中，定容至2L。
3. 使用時稀釋十倍成0.5X TBE。
50X TAE緩沖液母液的配制
1. 稱量Tris 484g，Na2EDTA·2H2O74.4g于2L燒杯中。
2. 向燒杯中加入ddH2O約1500mL，充分攪拌溶解。
3. 加入114.2mL的冰乙酸，充分攪拌。
4. 用ddH2O定容至2L后，室溫保存，待用。
5. 使用時稀釋50倍，即1X TAE。
電泳時的電壓、時間？
根據電泳槽的規格來確定， 看電泳槽多大，兩電極直接的距離，每cm 4~7V。例如一個20cm的電泳槽，電壓就應該設為80~140V間；電泳時間是根據電壓來確定，一般是20~30min。
每個點樣孔要多少μl樣品？
一般按照報告中的35個循環擴出的樣品，只需要點5μl即可。