因此，在電泳時應盡量避免使用具有高電滲作用的支持物。
醋酸纖維薄膜電泳是用醋酸纖維薄膜作為支持物的電泳方法。
醋酸纖維薄膜由二乙酸纖維素制成，它具有均一的泡沫樣的結構，厚度僅120微米，有強滲透性，對分子移動無阻力，作為區帶電泳的支持物進行蛋白電泳有簡便、快速、樣品用量少、應用范圍廣、分離清晰、沒有吸附現象等優點。目前已廣泛用于血清蛋白、脂蛋白、血紅蛋白和同功酶的分離及用在免疫電泳中。
三、器材及試劑：
1．器材
①醋酸纖維薄膜（2×8cm）
②常壓電泳儀
③點樣器（蓋玻片）
④培養皿（染色及漂洗用）
⑤粗濾紙
⑥玻璃板
⑦竹鑷
⑧白磁反應板
⑨人血清或雞血清
2．試劑：
①巴比妥緩沖液（PH8.6，離子強度0.07）：巴比妥2.76克，巴比妥納15.45克，加水至1000毫升。
②染色液：含氨基黑10B0.25克，甲醇50毫升，冰醋酸10毫升，水40毫升（可重復使用）。
③漂洗液：含甲醇或乙醇45毫升，冰醋酸5毫升，水50毫升。
④透明液：含無水乙醇7份，冰醋酸3份。
四、操作步驟：
1．浸泡：用鑷子取醋酸纖維薄膜1張（識別出光澤面與無光澤面，并在角上用鉛筆做上記號）放在緩沖液中浸泡20分鐘。
2．點樣：把膜條從緩沖液中取出，夾在兩層粗濾紙內吸干多余的液體，然后平鋪在玻璃板上（無光澤面朝上），將點樣器先在白磁板上的血清中沾一下，再在膜條一端2—3厘米處輕輕地水平落下并隨即提起，這樣即在膜條上點上了細條狀的血清樣品。
3．電泳：在電泳槽內加入緩沖液，使兩個電極槽內的液面等高，將膜條平懸于電泳槽支架的濾紙橋上。（先剪裁尺寸合適的濾紙條，取雙層濾紙條附著在電泳槽的支架上，使它的一端與支架的前沿對齊，而另一端浸入電極槽的緩沖液內。用緩沖液將濾紙全部潤濕并驅除氣泡，使濾紙緊貼在支架上，即為濾紙橋。它是聯系醋酸纖維薄膜和兩極緩沖液之間的“橋梁”。）膜條上點樣的一端靠近負極。蓋嚴電泳室。通電。調節電壓至160V，電流強度0.4—0.7毫安/厘米膜寬，電泳時間約為60分鐘。
4．染色：電泳完畢后將膜條取下并放在染色液中浸泡10分鐘。
5．漂洗：將膜條從染色液中取出，置漂洗液中漂洗數次至無蛋白區底色脫凈為止，可得色帶清晰的電泳圖譜。
6．定量：有兩種方法
（1）將上述漂凈的薄膜用濾紙吸干，剪下各種蛋白質色帶，分別浸于4.0ml0.4mol·l-1NaOH溶液中（37℃）5—10分鐘，色澤浸出后，比色（590nm）。設各部分的光密度分別為：
（2）把薄膜放在濾紙上用電吹風吹干，待薄膜完全干燥后，浸入透明液中約5—10分鐘，取出，平貼于干凈玻璃片上，自然干燥或用電吹風冷風吹干，即得背景透明的電泳圖譜，可用刀片刮開并從玻板上取下圖譜。能用光密度計測定各蛋白斑點。此圖譜可長期保存。
用本法測得血清蛋白各組分的正常值為：
白蛋白=67.24%（61.2—74.5%）
α1球蛋白 α2球蛋白 β球蛋白=16.92%（11.2—22%）
γ球蛋白=15.84%（10.4—20.6%）