實驗方法原理
IL-1與小鼠胸腺細胞共同培養時，IL-1可刺激小鼠胸腺細胞增殖。進一步通過3H-TdR摻入法或染料攝入法判定小鼠胸腺細胞增殖量，推定IL-1的生物學活性。通過檢測IL-1的生物學活性，可了解單核-巨噬細胞等的功能。
實驗材料 小鼠胸腺細胞
試劑、試劑盒 FCS-RPMI-1640培養液LPS刀豆蛋白A3H-TdR
實驗步驟
1. 小鼠巨噬細胞產生IL-1的誘導
（1）常規收集小鼠腹腔巨噬細胞，10%FCS-IMDM培養液懸浮細胞2×106/ml，接種于24孔培養板，0.5 ml/well。
（2）每孔加20 ug/ml LPS 0.15 ml，37度，5%CO2孵育36~48小時。
（3）此時培養上清內含巨噬細胞分泌的高水平IL-1，收集培養上清，12000 r/min 離心15分鐘，將上清移入新的1.5 ml 試管中，-20℃凍存。
2. IL-1的生物學活性測定
（1）胸腺細胞的制備：頸椎脫位處死小鼠，無菌取胸腺至于平皿中，加入5 ml 10%FCS-IMDM培養液，200目不銹鋼網制成單個細胞懸液；1500 r/min 離心10分鐘，再用5%Hank’s液洗滌細胞2次后，重懸于10%FCS-IMDM培養液中，調細胞濃度為1.0×107/ml。
（2）加樣：取胸腺細胞加入96孔細胞培養板，0.1 ml/well。再加入IL-1待測樣品或IL-1標準品，50 ul/well，實驗孔再加入50 ul ConA（終濃度0.625 ug/ml），同時設培養液對照孔（0.1 m l細胞+0.1 ml 培養液）、ConA對照（0.1 ml 細胞+50 ul 培養液+50 ul ConA），均設3復孔。37度，5%CO2孵育36~60小時。
（3）3H摻入：每孔加1.85×1010 uBq/20 ul（0.5 uCi/20 ul）3H-TdR，繼續培養8小時。
（4）測定：多孔細胞收集器收集細胞于玻璃纖維濾紙上，用β液體閃爍儀測定3H-TdR
（5）摻入量（cpm）以凈cpm值（實驗孔-ConA對照孔cpm值）為縱坐標，對應的不同稀釋濃度IL-1標準品為橫坐標，在半對數圖紙上繪制出標準曲線，再從標準曲線上查出待測樣品中的IL-1含量。
注意事項
1. 吸取LPS刺激的小鼠巨噬細胞培養上清時，必須離心，以除去細胞及細胞破碎成分。
2. ConA應選擇淋巴細胞轉化實驗的亞劑量，即選擇能夠激活胸腺細胞，又不引起明顯增殖的量，如果ConA過量，則不能有效反應IL-1的刺激活性。