蛋白質/多肽液相分析中的流動相選擇
有機溶劑可將吸附在疏水界面的蛋白質洗脫（圖14）。
在梯度洗脫期間，當有機溶劑量達到針對每一蛋白質的特定濃度時，蛋白質就會從疏水界面上解吸，繼續順著柱向下，從而從柱中洗脫。
圖14. 當有機改性劑的濃度達到特定值時，蛋白質從疏水界面洗脫。
乙腈。在多肽的反相色譜分離時最常用的有機溶劑為乙腈。為什么選擇乙腈？
乙腈易揮發，易從樣品中去除。
乙腈黏度低，柱壓低。
乙腈的紫外吸收截止波長較短。
乙腈長期用于分離應用。
異丙醇。異丙醇在多肽的色譜分離中具有重要作用。盡管異丙醇黏度大（會增大柱壓），很少單獨用作有機改性劑，但其在提高一些多肽的回收率方面具有重要作用，尤其是強疏水性蛋白。
在此類情況下，以1%~5%的恒定濃度加入異丙醇，以提高疏水性多肽的回收率或洗脫。
其它有機改性劑。很少使用甲醇或乙醇等有機改性劑，除非在分離強疏水性蛋白時。此外，由于乙醇毒性低，因此還用于蛋白質的大規模純化。
梯度洗脫。多肽的洗脫幾乎都采用梯度洗脫法，采用梯度洗脫法分離時，逐漸增大有機溶劑的相對濃度。
當有機改性劑的濃度升到解吸所需的特定濃度時，蛋白質和多肽就從柱上洗脫。如圖15所示，有機改性劑的濃度（梯度）變化速率越慢，這些蛋白亞基的分辨率越高。
在該例中，相較于每分鐘0.5%的梯度變化速率，每分鐘0.25%的梯度變化顯著提高了分辨率。
蛋白質/多肽的保留機制的圖1中顯示了采用每分鐘0.15%的梯度變化速率時幾種胰島素的分離過程。采用每分鐘0.05%的梯度變化速率洗脫時，分辨率最大。
圖15. 一般情況下，降低有機溶劑濃度變化速率會提高分辨率。
A. 細胞色素c亞基
B. 色譜圖A中間片段的重現。
色譜柱：C4 寬孔柱， 4.6 x 250 毫米
降低梯度變化速率增加分辨率時，所需的分析時間必須盡可能短。
但是，梯度變化速率的調整在優化蛋白質和多肽的分辨率方面非常重要。
有時，降低梯度變化速率時，多肽會表現出特異行為（圖16）。
分辨率有時不會按照預期增加，反而會降低，導致出現共洗脫，甚至洗脫順序也會顛倒。
在圖16的示例中，洗脫時間為45分鐘時多肽11和12表現出最佳的分離效果。
當洗脫時間增加至90分鐘時，多肽11和12間的分辨率降低；而當洗脫時間增加至160分鐘時，出現共洗脫峰。
這種保留行為是多肽表面相互作用的結果，導致這種行為的原因目前尚不清楚。
因此，在進行多肽分離時，尤其是在分離蛋白酶水解物時，觀察分辨率隨梯度坡度降低的變化很重要。
如果分辨率未增加，反而降低，則必須優化梯度變化速率，以最大化整體分辨率。
圖16. 多肽間分辨率有時隨著溶劑濃度變化速率的降低（洗脫時間增加）而降低。
這將導致分辨率降低或共洗脫峰的出現，如人生長激素肽圖中多肽11和12例示。
在一些情況下，多肽甚至會逆轉洗脫順序。
樣品人生長激素的胰蛋白酶水解物。部分顯示了多肽圖譜。
色譜柱：C18寬孔柱，4.6 x 150 mm
洗脫液：梯度：0~60%乙腈與水溶性溶劑和0.1%TFA混合液和有機溶劑與0.08%TFA混合液在一定時間內形成梯度洗脫。
蛋白質和多肽的反相色譜分析法需要“離子對試劑”。
在流動相中加入離子對試劑，以實現良好的峰形。
目前認為，在沒有離子對試劑的情況下，硅膠表面的金屬雜質是導致蛋白質/多肽峰形較差的原因。
三氟乙酸。三氟乙酸（TFA）是最常用的離子對試劑。將濃度為~0.1%的三氟乙酸加入流動相，會在大多數柱上產生良好的峰形（圖17）。
降低TFA的濃度能提高LC-MS的檢測靈敏度（見22~25頁），但由于硅膠表面存在雜質，可能會導致硅膠柱上的峰形較差。
但采用高純度硅膠柱時，可加入低濃度TFA（圖17A——0.01% TFA）。