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  • 發布時間:2020-06-22 09:56 原文鏈接: 小鼠胚胎成纖維細胞(MEF)原代培養實驗

    小鼠胚胎成纖維細胞(MEF)原代培養可以:(1)用于細胞保種;(2)用于分子生物學研究;(3)用于基因治療相關研究。

    實驗方法
    • 胰酶消化法1

    • 胰酶消化法2

    實驗方法原理

    將小鼠的胚胎成纖維細胞(MEF)從機體中取出,經胰酶、螯合劑(常用EDTA)處理,分散成單細胞,置MEF生長培養基中培養,使細胞得以生存、生長和繁殖。

    實驗材料

    孕鼠

    試劑、試劑盒

    PBS EDTA 胰酶 MEF生長培養基 FBS 高糖DMEM

    儀器、耗材

    眼科直剪 眼科直鑷 眼科彎鑷 玻璃平皿3 尼龍濾網 離心管 手術刀片

    實驗步驟

    一、實驗材料準備

    1.   動物
     

    孕期14至16天的孕鼠(小鼠)。
     

    2.   試劑

    無Ca2+和Mg2+的PBS(D-PBS)、0.05%胰酶、0.53 mmol/L EDTA溶液、MEF生長培養基(高糖DMEM加10%FBS)。
     

    3.  器械
     

    眼科直剪3把、眼科直鑷3把、眼科彎鑷2把、玻璃平皿3套、200目尼龍濾網、50 ml和15 ml離心管和手術刀片。以上物品均需要高壓滅菌消毒處理。


    二、具體操作


    1.  處死孕鼠,全身置于75%酒精里浸泡,然后在超凈臺中用剪刀和鑷子將孕鼠皮膚剪開,用另外一組剪刀、鑷子剪開腹部肌層,露出子宮,最后用第三組剪刀和鑷子將子宮小心取出放在盛有D-PBS的玻璃平皿中,沖洗去血。

     

    2.  用兩把彎鑷子將胚胎外的胞膜小心去除,然后夾掉頭和內臟,將其余胚胎轉移到一個裝有30 ml D-PBS的50 ml離心管中,輕輕顛倒兩次,倒掉D-PBS,再重復此步驟一次,注意要留少許D-PBS,然后將胚胎轉移到另一裝有D-PBS的平皿中,并用手術刀片將其細細切碎。

     

    3.  用200 μl的移液槍反復、快速地吹打平皿中的液體,轉移至15 ml離心管中,于4℃ 1500 rpm離心5分鐘,倒掉上清,以10 ml胰酶重懸沉淀,放在37℃水浴中消化30分鐘,且每隔五分鐘輕輕晃動,使之充分消化。

     

    4.   將上層細胞懸液倒入一個裝有10 ml MEF生長培養基的50 ml離心管中,用200目的尼龍網過濾后,以1 500 rpm離心5分鐘收集細胞,再用30 ml MEF生長培養基洗滌兩次。

     

    5.  細胞沉淀用15 ml MEF生長培養基重懸后進行細胞計數(一般8只14天的胎鼠可獲得2-3×107細胞)。

     

    6.   3×106細胞懸浮于15 ml MEF生長培養基中,接種到200 ml培養瓶中。

     

    7.  24小時后更換新鮮的MEF生長培養基。

     

    8.  細胞長滿后,先用D-PBS沖洗,倒掉后加胰酶消化(此步時間不宜過長,作者一般不超過五分鐘),按1:5傳代。

     

    9.  細胞再次長到覆蓋率80-90%左右,將其消化后,常規凍存(凍存液要現配)。
     

    小鼠胚胎成纖維細胞(MEF 100倍)

    注意事項

    1.   原代培養,一定要避免污染。
     

    2.   MEF生存能力有限,如果不凍存,體外存活十代左右。
     

    3.  凍存后復蘇的細胞只能傳代一次,因為這些細胞繁殖能力有限。
     

    4.  消化細胞時間不要過長。


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