淋巴細胞的分離

實驗方法原理 通過右旋糖酐促沉降作用去除紅血細胞后，將枸櫞酸或肝素抗凝的全血或血漿層加在致密的 Ficoll-Hypaque 層上面。離心后，大部分淋巴細胞位于 Ficoll-Hypaque 和血漿之間的界面。

實驗材料 肝素或枸櫞酸抗凝的血液樣本D-PBSAFicoll-Hypaque

試劑、試劑盒 無血清培養液

儀器、耗材 帶有鈍頭插管的注射器塑料Pasteur吸管或移液器血細胞計數器或電子細胞計數器離心機

實驗步驟

1. 用枸櫞酸或肝素抗凝容器采集血液標本（肝素或枸櫞酸抗凝的血液樣本，枸櫞酸或肝素的濃度依收集容器而定。透明的離心管或普通容器），然后送到實驗室。

2. 用 D-PBSA 按 1：1 稀釋后，將 9 ml 血液加在 6 ml Ficoll-Hypaque （將比重調整為 1.077 g/cc）上。使用帶蓋的粗大透明離心管如 25 ml Sterilin 或 Nimc 普通容器，或在 50 ml 透明的塑料 Corning 離心管中加入雙倍的液量。

3. 離心（400 g，15 min），這是在界面中心測量的離心速率。

4. 不要攪動界面，小心地吸出血漿和 D-PBSA 層。

5. 帶有鈍頭插管的注射器或塑料巴斯德吸管收集含有淋巴細胞的液層，然后用無血清培養液如 RPMI 1640 將其稀釋至 20 ml。

6. 將稀釋的細胞懸液離心（70 g，10 min）。

7. 棄去上淸液，用 2 ml 無血清培養液混懸沉降細胞。如果需要洗幾次（如除去血清因子），可再用 20 ml 無血清培養液混懸細胞，離心 2 次或 3 次。最后，用 2 ml 無血清培養液混懸沉淀細胞。

8. 取一份細胞樣本，用美藍染色，然后用血細胞計數器計數有核細胞。取另一份細胞樣本，用 Zapoglobin (Beckman Coulter) 溶解，利用 70~100 μm 口徑的管在電子細胞計數器上計數細胞核。

淋巴細胞與一些血小板和單核細胞集中于一層。雖然在步驟 3 離心的大部分粒細胞主要見于 Ficoll-Hypaque 中，但有些粒細胞可位于淋巴細胞層。通過利用單核細胞和粒細胞附著玻璃（微珠或培養瓶內表面）或尼龍網的特點，能將單核細胞和殘留的粒細胞從淋巴細胞層中除去。如果需要分離更純的細胞，可利用特異性淋巴細胞亞群的表面標志物，用 MACS 或 FACS 進行陽性分選。

注意事項

1. 人的血液可能受到 HIV 、肝炎病毒或其他病原體等的感染，在操作時應當特別小心。

2. 不要用玻璃 Pasteur 吸管和帶有銳利針頭的注射器加注入的血液，但可用 1 ml 移液器或帶有鈍頭插管的注射器。