作QPCR的
標準曲線
可以用PCR-
ELISA法
作。
具體如下:
PCR-ELISA法:
利用
地高辛
或
生物素
等標記
引物
,擴增產物被固相板上特異的探針所結合;
再加入抗地高辛或生物素酶標抗體-
辣根過氧化物酶
結合物,最終酶使底物顯色。
常規的PCR-ELISA法只是
定性實驗
,加入
內標
,作出標準曲線,也可實現定量檢測目的。
通過測定一系列已知組分的標準物質的某理化性質,從而得到該性質的數值所組成的曲線。
擴展資料:
實時熒光
定量PCR
技術,在
PCR反應體系
中加入熒光基團,利用熒光信號積累實時監測整個PCR進程,最后通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法。
檢測方法:
1、SYBRGreenⅠ法:
在PCR反應體系中,加入過量SYBR
熒光染料
,SYBR熒光染料特異性地摻入DNA雙鏈后,發射熒光信號。
而不摻入鏈中的SYBR染料分子不會發射任何熒光信號,從而保證熒光信號的增加與PCR產物的增加完全同步。
SYBR定量
PCR擴增
熒光
曲線圖
、PCR產物
熔解
曲線圖(單一峰圖表明PCR擴增產物的
單一性
)。
2、
TaqMan探針
法:
探針完整時,報告基團發射的熒光信號被
淬滅
基團吸收;
PCR擴增時,Taq酶的5’-3’
外切酶
活性將探針
酶切
降解,使報告熒光基團和淬滅熒光基團分離,從而熒光監測系統可接收到熒光信號。
即每擴增一條DNA鏈,就有一個熒光分子形成,實現了熒光信號的累積與PCR產物的形成完全同步。
PCR反應的前15個循環的熒光信號作為熒光本底信號,熒光閾值的缺省(默認)設置是3-15個循環的熒光信號的
標準偏差
的10倍,即:
threshold
=
10*SDcycle
3-15。
利用已知起始
拷貝數
的
標準品
可作出標準曲線,其中橫坐標代表起始拷貝數的對數,
縱坐標
代
Ct值
。因此,只要獲得未知樣品的Ct值,即可從標準曲線上計算出該樣品的起始拷貝數。
參考資料:
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