成纖維細胞的分離

實驗方法原理 下述的通用操作方案適用于小鼠、大鼠、倉鼠和雞胚胎。選擇大約一半足孕時間的胚胎最好，10~13天齡胚胎含有最大數量的未分化的間質細胞，成纖維細胞可從這些細胞衍生獲得。圖4.1顯示了小鼠胚胎的取出和解剖，圖4.2顯示的是雞胚胎的取出過程。

實驗步驟

1) 胚胎的分離。

適用哺乳動物（倉鼠、小鼠和大鼠）

a. 采用認可的方案處死嚙齒動物。

b. 立即在無菌超凈臺內用 70% 乙醇擦洗整個動物。若可能，置紫外燈下照射 5 分鐘。

c. 用無菌的鑷了和剪子在前腿下作一腹部水平切口，用無菌鑷子將皮膚扯向后腿。

d. 用另一無菌的剪刀和鑷子切開腹部，取出含有胚胎的子宮，置于無菌的培蕎皿上。

e. 剔除胚胎周圍的包膜，將胚胎放于無菌的含有無菌 PBS 的燒瓶中。

f. 漂洗胚胎，去掉 PBS。繼續用 PBS 漂洗胚胎直至清洗液清亮為止。

適用雞胚胎

a. 用 70% 乙醇擦洗雞蛋殼。

b. 用無菌剪刀輕敲雞蛋的圓端，輕輕去除蛋殼露出氣囊。

c. 用無菌攝子去除覆蓋于絨毛尿囊上的白膜。

d. 剪開包膜，用彎鑷夾住胚胎頸部取出胚胎。

e. 棄頭部，將無頭的胚胎置于廣口燒杯中，用 PBS 漂洗。

2) 將 6~8 個胚胎轉移至一個小的無菌廣口燒杯屮，用新的無菌剪刀小心地絞碎胚胎,

用 PBS 漂洗。

3) 在無菌狀態下，將絞碎的胚胎轉移于一 500 ml 的無菌的有攪拌棒的燒杯中，加人

200~300 ml 用 HBSS 配制的 0.25％ 的無菌胰蛋白酶（CIBCO/BRL)。

4) 在溫暖的環境中或置于 37°C 培養箱中輕輕攪動 15 分鐘。

5) 讓存留的組織塊在重力作用下慢慢沉降，將含冇懸浮細胞的液體轉移至一無菌大容積的離心管中，該管內按照每 10 ml 上清加人 1 ml 牛血清的比例加人牛血淸以滅活胰蛋白酶。

6) 加人新鮮胰蛋白酶溶液（見前述步驟）于含有殘留未消化組織塊的 500 ml 燒杯中，重復步驟 4 和 5。

7) 離心混合的細胞懸液，1200r/min，5 分鐘，棄上清。

8) 用新鮮的無菌 PBS 重懸沉淀的細胞，按步驟 7 再次離心。

9) 用 PBS 反復洗滌細胞至上清清亮為止。

即用含有 10% 牛血清和抗生素（如青霉素、鏈霉素）的 DMEM(CIBCO/BRL)10 ml 再懸沉淀，并使終體積為 100 ml。

11) 讓殘留的大塊未破碎的組織或特殊顆粒物質沉降。

可采用數層無菌紗布過濾細胞懸液以去除任何殘留的細胞塊。

12) 為確定現有細胞濃度，加人 0.2 ml 細胞懸液于 1.8 ml1% 醋酸溶液中以裂解紅細胞，用血細胞計數器進行細胞計數（見第 2 節中的"細胞計數")

13) 按每 10 mm 平皿 1x107 至 4x107 細胞的數量接種于 10 ml 組織培養液中，在飽和濕度的 C02 培養箱中孵育直至細胞鋪滿。

14) 當細胞長滿后，去除培養液，用 10% 的溫暖的 Versene（用 PBS 配制的 0.53 mmol/L EDTA,GIBCO/BRL) 洗滌細胞層 2 次。

15) 棄 Versene，加人相同體積的溫暖化 0.05% 胰蛋白酶-EDTA(GIBCO/BRL)

16)37°C 孵育 5 分鐘

17) 用無菌吸管輕輕吹散細胞，并轉移至一含 1~2 ml 牛血清的無菌管中。

18) 離心，1200/min,5 分鐘，棄上清。

19) 再懸沉淀于 5 ml 培養液屮（見上文），另加人 15 ml 培養液，分裝于 2 個 100 mm 平皿中。

20) 置 37°C 飽和濕度的 C02 培養箱中培養細胞，直至細胞長滿，繼續步驟 14~20 以傳代細胞。

注意事項

以此種方式培養的細胞傳代許多次均生長良好，在前兒次傳代后，僅成纖維樣細胞可存活，可按第2節的方法進行細胞的凍存。