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  • 發布時間:2020-08-18 11:52 原文鏈接: 淀粉酶的固態發酵實驗

    實驗方法原理 淀粉酶有催化淀粉水解的作用,能從淀粉分子非還原性末端開始,分解a-1,4-葡萄糖苷鍵生成葡萄糖。在堿性條件下,還原糖與3,5-二硝基水楊酸共熱,3,5-二硝基水楊酸被還原為3-氨基-5-硝基水楊酸(棕紅色物質),還原糖則被氧化成糖酸及其它物質。在一定范圍內,還原糖的量與棕紅色物質顏色深淺的程度呈一定的比例關系,可在722型分光光度計540 nm波長測定棕紅色物質的吸光度值。查標準曲線計算,可求出發酵液中還原糖的含量,從而求出淀粉酶活力。

    實驗材料 麩皮面粉

    試劑、試劑盒 NaNO3 KH2PO4(NH4)2SO4CaCl2MgSO4·7H2OCoCl2FeSO4·7H2OZnSO4

    儀器、耗材 分光光度計恒溫水浴鍋生化培養箱磁力攪拌器三角瓶

    實驗步驟

    一、實驗主要儀器設備和材料

     

    分光光度計、恒溫水浴鍋、生化培養箱、磁力攪拌器、三角瓶、麩皮、面粉、NaNO3 、KH2PO4、(NH4)2SO4、CaCl2、MgSO4.7H2O、CoCl2、FeSO4·7H2O、ZnSO4。

     

    二、實驗方法、操作步驟

     

    1.  還原糖的測定

     

    (1)標準曲線的制作

     

    取9支干燥試管編號,按表1所示的量,精確濃度為1.00 mg/ml的葡萄糖標準液和3,5-二硝基水楊酸試劑。表中單位為ml。  


    將各管搖勻,蓋上小漏斗,在沸水浴中加熱5 min,立即用冷水冷卻至室溫,再向各管中加入蒸餾水至 20.5 ml,用橡皮塞塞住管口,混勻。切勿用力振搖,以免引入氣泡。在540 nm波長下,以0號管為空白,在分光光度計上測定1-8號管的吸光度值。以吸光度值為縱坐標,葡萄糖毫克數為橫坐標,繪制標準曲線。 


    (2)發酵液中殘留還原糖的測定

     

    發酵液單層濾紙過濾,濾液0.2 ml定容至100 ml,500倍稀釋至含糖量2-8 mg/100 ml為試樣。

     

    取4支干燥試管,編號,按表2所示的量,精確加入待測液和試劑(ml)

     

    試劑加入后,其余操作步驟與制作葡萄糖標準曲線時的相同,測定出各管溶液的吸光度值。

     

    計算

     

    以管1、2、3的吸光度值的平均值在標準曲線上查出相應的還原糖毫克數,按下式計算樣品中還原糖的百分含量: 


    2.  氨基態氮的測定

     

    (1)取發酵濾液5.00 ml,置于100 ml燒杯中,加入15 ml水,磁力攪拌器攪拌5 min后,將電位計插入燒杯中,用0.1 mol/L NaOH標準溶液滴定至酸度計指示pH=8.20,此為游離酸度,不予計量。加入10.0 ml甲醛溶液,立即混勻,迅速用0.1 mol/L NaOH標準溶

    液滴定至酸度計指示pH=9.20,計下消耗NaOH標準溶液的毫升數。同時用水做空白實驗。

     

    (2)計算

     

    氨基氮(%)=(V-V0)×N×0.014×20/5×100

     

    式中: V--加甲醛后試液消耗氫氧化鈉體積,ml;

     

    V0--加甲醛后空白液消耗氫氧化鈉體積,ml;

     

    M-- NaOH標準溶液的濃度,mol/L;

     

    0.014--與1.00 ml NaOH標準溶液相當的氮的質量,g;

     

    (3)淀粉酶活力的測定及計算

     

    淀粉酶活力(IU/g干培養基):本實驗條件下,每分鐘釋放出1umol還原糖所需要的酶量稱為一個酶活力單位。

     

    (4)總體實驗操作流程:

     

    ①配制培養基,滅菌,冷卻。

     

    ②冷卻后接種,并攪拌均勻,置于28 ℃培養箱進行培養。

     

    ③每隔24 h取樣,用0.2 M 磷酸氫二鈉和磷酸二氫鈉緩沖液(pH6.0)按一定的浸提比進行浸提1 h,離心得粗酶液。共取樣6次。

     

    ④分別測定酶液中淀粉酶活力、還原糖和蛋白質含量。

     

    三、實驗結果

     

    1.  以還原糖濃度為縱坐標,培養時間為橫坐標,繪出不同時間還原糖的變化曲線。

     

    2.  以氨基態氮濃度為縱坐標,培養時間為橫坐標,繪出不同時間氨基態氮的變化曲線。

     

    3.  以淀粉酶活力為縱坐標,培養時間為橫坐標,繪出不同時間淀粉酶活力的變化曲線。


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