什么是LAMP?
環介導等溫擴增(Loop-mediated isothermal amplification,LAMP)是Notomi等人于2000年提出來的一種新的核酸擴增技術。針對靶基因的6個區域設計4種特異引物,在鏈置換DNA聚合酶(Bst DNA polymerase)作用下,可以在60-65℃溫度范圍內進行恒溫擴增。在擴增的初始階段,由于引物的延伸和初級擴增子的連續鏈置換,形成了啞鈴狀反應中間體,相較于PCR反應擴增機制更為復雜,但是卻大大縮短了擴增時間,15-60分鐘內即可實現109-1010核酸擴增,可以一步完成基因的擴增和檢測,已被廣泛地應用于病原微生物檢測和傳染性疾病診斷等領域。
LAMP的作用機制
LAMP 反應可分為復制起始、循環擴增,延伸三個階段(如下圖所示)。LAMP不同于PCR,它不需要通過熱變性來促進雙鏈DNA轉化為單鏈。在復制起始階段,由于雙鏈DNA在65°C條件下處于動態平衡穩定狀態,一條LAMP引物可以與雙鏈靶基因的互補序列結合,在鏈置換DNA聚合酶作用下,啟動DNA的合成,最終形成啞鈴狀互補鏈,即為進入循環擴增的起始原料。繼而通過連續鏈置換進入循環擴增階段,最后延伸階段,擴增的最后產物是具有不同個莖環結構、多環花椰菜樣結構的DNA的混合物,且產物DNA為擴增靶序列的交替反向重復序列。
圖1. LAMP 反應過程圖。F1、F2、F3是靶基因上約20 bp長的序列片段,B1、B2、B3則是位于互補鏈上長度約20 bp的序列,F1c和B1c分別是F1和B1的互補區。
LAMP與PCR擴增區別
什么是RT-LAMP?
逆轉錄環介導等溫擴增法(RT-LAMP) 將環介導等溫擴增(LAMP)與逆轉錄反應相結合,直接檢測出RNA的方法,當它與反應混合物中的pH指示劑耦合時,可以通過顏色變化獲得檢測結果。在新冠檢測應用上,可以在60-65°C等溫條件下,一步進行RNA逆轉錄和核酸擴增過程,30 min即可得到結果,同時檢測ORF1ab基因、E基因和N基因。由于ORF1ab基因具有很強的特異性,N基因具有很強的敏感性,這種方法可以保證病毒檢測的靈敏性和特異性。
RT-LAMP與RT-qPCR的區別?
★LAMP引物設計
LAMP的特點是使用4或6種不同的引物,專門設計用于識別目標基因的6個不同區域,包括3'端的F3c、F2c和F1c區域和5'端的B1、B2和B3區域,如圖1所示。引物設計包括:
正向內引物(Forward Inner Primer, FIP):由F2區和F1c區域組成,F2區與靶基因3’端的F2c區域互補,F1c區與靶基因5’端的F1c區域序列相同;
正向外引物(Forward Outer Primer , FOP/ F3 ):由F3區組成,與靶基因的F3c區域互補;
反向內引物( Backward Inner Primer , BIP ):由B1c和B2區域組成,B2區與靶基因3’端的B2c區域互補,B1c區域與靶基因5’端的B1c區域序列相同;
反向外引物(Backward Outer Primer, BOP/B3):由B3區域組成,與靶基因的B3c區域互補。
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