引物溶解引物保存
1. 如何測定引物的OD值？用紫外分光光度計在260nm波長測定溶液的吸光度來定量，請注意紫外分光光度計的使用，測定時溶液的吸光度最好稀釋到0.2~0.8之間（吸光度太高或太低會有較大的誤差）。DNA干粉用一定體積的水充分振蕩溶解以后，取部分溶液稀釋到1 ml 并在1 ml 標準比色皿中測定其吸光度，即為所測體積的OD值，進而可以計算出母液的OD值。舉例：您拿到一管干粉的DNA，用1ml水溶解成母液，取該母液50 μL 稀釋成1 ml 并在1 ml 標準比色杯中測定的吸光度為0.25，說明該50 μL中含有0.25OD的DNA，也即說明原來1ml母液中含有5OD的DNA。2. 怎樣溶解引物？生工的合成報告單給出了每OD引物稀釋為100 μmoL/L（即100 pmol/ul）濃度的加水量，您可以根椐您的實驗需要加入適量的無核酸酶的雙蒸水（PH>6.0）或TE緩沖液（PH7.5~8.0），開啟瓶蓋溶解之前最好在3000~40......閱讀全文
引物溶解引物保存
1. 如何測定引物的OD值？用紫外分光光度計在260nm波長測定溶液的吸光度來定量，請注意紫外分光光度計的使用，測定時溶液的吸光度最好稀釋到0.2~0.8之間（吸光度太高或太低會有較大的誤差）。DNA干粉用一定體積的水充分振蕩溶解以后，取部分溶液稀釋到1 ml 并在1 ml 標準比色皿中測定其吸光度
引物溶解引物保存
1. ?如何測定引物的OD值？ 用紫外分光光度計在260nm波長測定溶液的吸光度來定量，請注意紫外分光光度計的使用，測定時溶液的吸光度最好稀釋到0.2~0.8之間（吸光度太高或太低會有較大的誤差）。DNA干粉用一定體積的水充分振蕩溶解以后，取部分溶液稀釋到1 ml 并在1 ml 標準比色皿中測定其
如何溶解和保存引物？
如何溶解引物？干燥后的引物質地非常疏松，開蓋前最好瞬時離心一下，或管垂直向上在桌面上敲敲，將引物粉末收集到管底。根據計算出的體積加入去離子無菌水或TE(pH8.0)緩沖液，室溫放置幾分鐘，振蕩助溶，離心將溶液收集到管底。溶解引物用的水一般不要用蒸餾水，因為有些蒸餾水的pH值比較低（pH4-5）,引物
如何保存引物？
引物合成后，經過一系列處理和純化步驟，旋轉干燥而成無色或白色絮狀干粉。干 粉：運輸時常溫運輸，-20℃可以保存一年。儲存液：配好后分裝成幾管，避免反復凍融，-20℃可以保存半年。工作液：常規使用，4℃保存，也可-20℃保存，但應避免反復凍融。修飾熒光引物：需要避光保存，盡快使用為宜。
引物如何保存？
拿到手的引物一般已分裝為兩管。我們建議先溶解其中一管用于實驗，另一管干粉保存備用，以備不時之需。干粉狀態的引物非常穩定。-20℃可保存2年以上。常見的做法是將引物溶解至10倍的存儲度，-20℃長期保存。使用時取出稀釋至1倍的工作液。工作液保存于4℃即可。在4℃下引物溶液是比較穩定的，保存一周以上仍可
怎樣溶解引物？
生工的合成報告單給出了每OD引物稀釋為100 μmoL/L（即100 pmol/ul）濃度的加水量，您可以根椐您的實驗需要加入適量的無核酸酶的雙蒸水（PH>6.0）或TE緩沖液（PH7.5~8.0），開啟瓶蓋溶解之前最好在3000~4000轉/分鐘的轉速下離心1分鐘，防止開蓋時引物散失。
如何溶解引物？
干燥后的引物質地非常疏松，開蓋前最好離心一下，或管垂直向上在桌面上敲敲，將引物粉末收集到管底。根據計算出的體積加入去離子無菌水或10mM Tris pH7.5緩沖液，室溫放置幾分鐘，振蕩助溶，離心將溶液收集到管底。溶解引物用的水一般不要用蒸餾水，因為有些蒸餾水的pH值比較低（pH4-5）,引物在這種
引物溶解稀釋方法
在實驗室進行分子克隆實驗時，經常需要合成大量的引物，而這些合成的引物首先要進行適當的稀釋才能使用。如果不稀釋就使用引物，往往造成引物的浪費和過早的活性喪失，更有一些被污染而不能使用。因此，建議對合成的引物先進行稀釋，然后使用。稀釋的引物利于保存和應用。現將方法簡單敘述如下：1. Oligo DNA是
設計引物遵循原則、引物保存和各種PCR的引物設計
一 設計引物應遵循以下原則1 、引物長度： 15-30bp，常用為20bp左右。2 、引物擴增跨度： 以200-500bp為宜，特定條件下可擴增長至10kb的片段。3 、引物堿基：G+C含量以40-60%為宜，G+C太少擴增效果不佳，G+C過多易出現非特異條帶。ATGC最好隨機分布，避免5個以上
引物稀釋后能保存多久
-20攝氏度放個一兩年沒有問題
引物稀釋后能保存多久
引物在溶解前,室溫狀態下都可以長期保存.使用pH7.5-8.0的TE 緩沖液溶解引物,在-20℃可以保存兩個月甚至半年以上,-4℃保存兩周一般也沒有問題.不建議使用蒸餾水溶解引物,因為有些蒸餾水的 pH 值比較低（ pH4-5 ） , 引物在這種條件下不穩定. 另外需要提醒的是收到引物后一定先離心,
合成的引物應如何保存？
沒有溶解的引物非常穩定，可以在-20℃下保存至少1年，溶解好的引物可以事先稀釋為100 μmoL/L 的儲存液，分裝數份保存于-20℃冰箱，可以保存至少半年以上（反復多次凍融會降低使用壽命）。使用前，將濃溶液稀釋成工作液（10 pmol/ml或20 pmol/ml）后進行實驗。注意：工作液千萬別用T
引物稀釋后能保存多久
引物在溶解前，室溫狀態下都可以長期保存。使用pH7.5-8.0的TE 緩沖液溶解引物，在-20℃可以保存兩個月甚至半年以上，-4℃保存兩周一般也沒有問題。不建議使用蒸餾水溶解引物，因為有些蒸餾水的 pH 值比較低（ pH4-5 ） ， 引物在這種條件下不穩定。 另外需要提醒的是收到引物后一定先離心，
引物稀釋后能保存多久
引物在溶解前，室溫狀態下都可以長期保存。使用pH7.5-8.0的TE緩沖液溶解引物，在-20℃可以保存兩個月甚至半年以上，-4℃保存兩周一般也沒有問題。不建議使用蒸餾水溶解引物，因為有些蒸餾水的pH值比較低（pH4-5）,引物在這種條件下不穩定。另外需要提醒的是收到引物后一定先離心，將引物粉末收集于
已經溶解的引物的問題
已經溶解的引物，為什么原先使用正常，而過一段時間再使用就不好了？如果您溶解引物的水pH過低或污染了菌或核酸酶，會使引物降解。使用時沒有充分解凍混合，液體不均勻也可能會造成引物加入量不準確。建議分裝引物，避免反復凍溶。建議使用10mM Tris pH7.5緩沖液溶解引物，因為有些蒸餾水的pH值
溶解引物需要什么水
先離心！然后加入適量的水或TE溶解。一般配制成較高濃度的母液（約100μM），保存于-20℃。使用前取出其中一部分用ddH2O配制成10μM或20μM的工作液。引物濃度不宜偏高，濃度過高有兩個弊端：一是容易形成引物二聚體（primer-dimer），二是當擴增微量靶序列并且起始材料又比較粗時，容易產
用什么溶解引物最合適？
常用的溶劑是水或者TE緩沖液（pH7.4——8.0），兩者在實際實驗中都是常用的。一般認為，TE緩沖液比較穩定，能提供穩定的pH環境，適合于保存引物（以及質粒或基因組DNA）。但也有人認為，TE中的EDTA分子會影響后續PCR的效率。如果您很注重PCR效率的話就要考慮到這一點。而雙蒸水很易得，操作方
引物設計的引物設計原則
1、引物長度一般為15-30bp，常用的為18-27bp，但不能大于38bp；2、引物GC含量一般為40%-60%，以45-55%為宜，上下游引物GC含量和Tm值要保持接近；3、引物所對應的模板序列的Tm值最好在72℃左右，至少要在55-80℃之間，Tm值曲線以選取72度附近為佳，5'到 3
引物設計的引物設計原則
1、引物長度一般為15-30bp，常用的為18-27bp，但不能大于38bp；2、引物GC含量一般為40%-60%，以45-55%為宜，上下游引物GC含量和Tm值要保持接近；3、引物所對應的模板序列的Tm值最好在72℃左右，至少要在55-80℃之間，Tm值曲線以選取72度附近為佳，5'到 3
引物設計的引物設計原則
1、引物長度一般為15-30bp，常用的為18-27bp，但不能大于38bp；2、引物GC含量一般為40%-60%，以45-55%為宜，上下游引物GC含量和Tm值要保持接近；3、引物所對應的模板序列的Tm值最好在72℃左右，至少要在55-80℃之間，Tm值曲線以選取72度附近為佳，5'到 3
引物設計的引物設計原則
1、長度：15—30bp，其有效長度[Ln=2(G十C)十(A十T)]一般不大于38，否則PCR的最適延伸溫度會超過Taq酶的最佳作用溫度(74度)，從而降低產物的特異性。2、G十C含量：應在40%一60%之間，PCR擴增中的復性溫度一般較Tm值低等于引物的Tm值減去5—10度。引物長度小于20時，
快速了解反轉錄引物隨機引物
隨機引物是指當特定mRNA由于含有使逆轉錄酶終止的序列而難于拷貝其全長序列時，可采用隨機六聚體這一非特異的引物來拷貝全長mRNA。 1.特異性引物一般在增低豐度目的基因才選擇使用，用得比較少。一般都推薦用Oligo(dT)或隨機引物代替基因特異性引物。由于rna的二級結構破壞不完全，導致特異性
什么是上游引物和下游引物
雖然這個問題很簡單，但我怎么發覺挺難回答的......上游引物就是和要擴增基因片斷上游序列結合的引物（引物就是單鏈寡聚核苷酸，基因擴增需要從引物開始），同理，下游引物指與目的基因片斷下游序列結合者。具體示意如下：（上下兩條長線代表DNA模板）5'-----------------------
PCR引物
PCR Primer Design and Reaction Optimization?(Molecular Biology Techniques Manual)??PCR Primer Design?(Newman Lab)??PCR Primer Design?(Eppendorf)Detail
PCR引物
PCR?Primer Design and Reaction Optimization?(Molecular Biology Techniques Manual)??PCR Primer Design?(Newman Lab)??PCR Primer Design?(Eppendorf)Detail
設計引物時需要避免引物之間形成什么而造成引物自連。
設計引物時需要避免引物之間形成_堿基互補配對。而造成引物自連。相同末端或相同黏性末端或相同平末端。末端特指雙鏈DNA分子的端位堿基，是專用名詞，不可以用在單鏈引物上。且引物之間的堿基互補配對不一定是所有堿基都能夠互補配對，少量配對也會使兩種引物結合在一起，從而不能獲得特異性DNA產物。
引物篇：普通PCR－和－QPCR－引物異同點
Q問題： 普通PCR 和 QPCR 引物 是否一樣？ A 回答： 二者的設計原則有相同也有不同； 相同處： ? 序列的查找是一致的； ? 序列選取應在基因的保守區段； ? 選取合適的擴增片段大小 ?
PCR引物和測序引物有什么區別
一、定義不同：PCR是體外酶促合成特異DNA片段的一種方法，由高溫變性、低溫退火（復性）及適溫延伸等反應組成一個周期，循環進行，使目的DNA得以迅速擴增,具有特異性強、靈敏度高、操作簡便、省時等特點。測序引物分自帶引物和通用引物，自帶引物為客戶自行設計的PCR擴增引物或者載體及目的片段上設計的引物進
引物篇：普通PCR－和－QPCR－引物異同點
Q問題： 普通PCR 和 QPCR 引物 是否一樣？ A 回答：?????二者的設計原則有相同也有不同；相同處：??????????序列的查找是一致的；??????????序列選取應在基因的保守區段；??????????選取合適的擴增片段大小??????????避免引物自身或與引物之間形成4個或4個
上游引物和下游引物有什么區別
簡單的說上游引物就是和要擴增基因片斷上游序列結合的引物,下游引物指與目的基因片斷下游序列結合者.上游引物：DNA分子兩端不一樣，因為核苷酸分子不是對稱的，5'位有個磷酸，3'位是-OH 就是：磷酸端和羥基端。DNA復制總是從5’端到3’端，因為DNA聚合酶只能往3’端加核苷酸。下游引