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    DNA回收電泳槽

    產品詳細描述 產品特點 □“V”型槽結構,回收凝膠上指定的DNA □ 回收范圍寬,超出200b~20Kb □ 回收效率高,可達到95%以上 □ 不需透析膜和專用回收試劑,成本低廉 □ 操作簡單,容易掌握,可以觀察回收效果 有效回收電泳后的指定DNA,用于大多數的同工酶反應 性能指標 用于電洗脫回收DNA。 回收率可達95%以上,每次可做6個樣品。 ......閱讀全文

    DNA重組技術(Recombinant DNA)實驗原理、用品和步驟(二)

    【實驗步驟】 1.PCR產物純化 PCR產物經瓊脂糖凝膠電泳,應用凝膠回收試劑盒回收純化目的DNA片段。 2.目的DNA片段連接至T/A克隆載體 即重組DNA分子的構建 反應體系及條件如下: 3.轉化 3.1 將感受態細胞置冰中融解。 3.2 將60μl感受態細胞移至無菌

    核酸凝膠電泳-4

    5、室溫下聚合至少30min,若聚合完全,梳齒下可見二條折光線,小心拔出梳子,用水沖洗樣品孔。6、在電泳槽中加入1×TBE緩沖液,使緩沖液覆蓋樣品孔,并用緩沖液稍淋洗樣品孔。7、加上1/6體積6×上樣緩沖液與DNA樣品及DNA分子量標準液中混合,用微量進樣器吸取,小心快速地加入加樣孔中(一般加樣量3

    cDNA文庫組標準流程-5

    4EcoRIadaptor加接:1.往雙鏈 cDNA沉淀中加入9ulEcoRI adaptor(400ng/ul),4℃至少放置30分鐘以充分溶解cDNA沉淀;2.溶解完成后,順序加入下列試劑:1.2ul 10×Ligase Buffer1ul 10mMrATP1ul T4DNA Ligase(4U

    DNA的酶切消化與凝膠回收

    [實驗原理]限制性內切酶是分子操作中重要的工具酶,是一類能夠識別雙鏈DNA分子某種特定的核苷酸序列并切割雙鏈DNA分子的核酸內切酶。可分為3類,Ⅰ和Ⅲ類限制酶兼有甲基化等修飾作用及以來ATP的限制性切割活性,前者結合于識別位點隨即切割DNA,后者則在識別位點切割。Ⅱ類限制酶是由兩種酶分子組成的復合體

    瓊脂糖凝膠電泳實驗——瓊脂糖凝膠電泳

    瓊脂糖凝膠電泳可應用于:(1)DNA切膠回收;(2)DNA分離;(3)佐證DNA是否重組,質粒等是否切開以及其他分子生物學研究。實驗方法原理用瓊脂糖作支持介質的一種電泳方法。其分析原理與其他支持物電泳的最主要區別是:它兼有“分子篩”和“電泳”的雙重作用。瓊脂糖凝膠具有網絡結構,物質分子通過時會受到阻

    DNA的瓊脂糖凝膠電泳實驗

    DNA電泳可用于:(1)分離不同大小的DNA片段;(2)鑒定目的DNA片段;(3)純化和回收DNA片段。實驗方法原理DNA瓊脂糖凝膠電泳的基本原理是利用DNA分子在瓊脂糖凝膠中泳動時具有的電荷效應和分子篩效應。電荷效應是指DNA分子在高于等電點的pH溶液中帶負電,在電場中向正極移動,且相同數量的雙鏈

    分子克隆(molecular coloning)常用技術

    一、核酸的純化在分子克隆 的所有操作中,最基本的操作是核酸的純化。其關鍵步驟是去蛋白質,通常只要用酚/氯仿。氯仿抽提核酸的溶液即可。每當需要把克隆 有某一些所用的酶滅活或去除以便進行下一步時,可進行這種抽提。然而,如要從細胞裂解液等復雜的分子混合物中純化核酸,則要先用某些蛋白水解酶消化大部分蛋白

    分子克隆常用技術簡介(核酸純化、濃縮、電泳和DNA、RNA的...

    分子克隆常用技術簡介(核酸純化、濃縮、電泳和DNA、RNA的定量)一、核酸的純化在分子克隆的所有操作中,最基本的操作是核酸的純化。其關鍵步驟是去蛋白質,通常只要用酚/氯仿。氯仿抽提核酸的溶液即可。每當需要把克隆有某一些所用的酶滅活或去除以便進行下一步時,可進行這種抽提。然而,如要從細胞裂解液等復雜的

    隨機RNA文庫的SELEX篩選實驗

    隨機RNA文庫的SELEX篩選實驗可用于:(1)體外診斷;(2)體內治療等。實驗方法原理SELEX 技術是一種利用隨機寡核苷酸(DNA 或 RNA)文庫篩選靶分子的特異性配基的組合化學技術。最常用的是隨機 RNA 文庫,因為 RNA 分子中除 G-C、A-U 堿基對以外,還有 G-U 等變偶堿基對的

    電泳技術

    電泳法,是指帶電荷的供試品(蛋白質、核苷酸等)在惰性支持介質(如紙、醋酸纖維素、瓊脂糖凝膠、聚丙烯酰胺凝膠等)中,于電場的作用下,向其對應的電極方向按各自的速度進行泳動,使組分分離成狹窄的區帶,用適宜的檢測方法記錄其電泳區帶圖譜或計算其百分含量的方法。    電泳技術的

    分子生物學常用實驗技術(page 3)

    分子雜交技術    互補的核苷酸序列通過Walson-Crick 堿基配對形成穩定的雜合雙鏈分子DNA 分子的過程稱為雜交。雜交過程是高度特異性的,可以根據所使用的探針已知序列進行特異性的靶序列檢測。雜交的雙方是所使用探針和要檢測的核酸。該檢測對象可以是克隆化的基因組DNA,也可以是細胞總DN

    cDNA文庫構建

    cDNA文庫構建             實驗方法原理 cDNA 文庫是指某生物某發育時期所轉錄的全部 mRNA 經反轉

    cDNA文庫構建

    cDNA文庫構建可以:(1)用于分離全長基因進而開展基因功能研究;(2)篩選目的基因并直接用于表達;(3)提供構建分子標記連鎖圖譜的所用探針。實驗方法原理cDNA 文庫是指某生物某發育時期所轉錄的全部 mRNA 經反轉錄形成的 cDNA 片段與某種載體連接而形成的克隆的集合。經典 cDNA 文庫構建

    DNA指紋圖譜分析[DNA Fingerprinting ]

    一. 實驗目的1. 掌握DNA指紋圖譜技術的概念、原理和基本操作過程2. 學習DNA的限制性酶切的基本技術3. 掌握瓊脂糖凝膠電泳的基本操作技術,學習利用瓊脂糖凝膠電泳測定DNA片段的長度,并能對實驗結果進行分析。二. 實驗原理1984年英國萊斯特大學的遺傳學家Jefferys及其合作者首次將分離的

    土壤微生物DNA提純方法及純度檢測

    實驗概要本實驗比較了聚乙烯基吡咯烷酮(PVP)和交聯聚乙烯基吡咯烷酮(PVPP)在DNA提取過程中的純化作用,并利用低電壓長時間電泳法及PVP電泳法對純化的DNA樣品進行了檢測。主要試劑DNA提取緩沖液(100 mmol/L Tris, 100 mmol/L EDTA, 100 mmol/L Na3

    瓊脂糖凝膠電泳儀的使用步驟

      瓊脂糖凝膠是以瓊脂糖為支持介質制備的凝膠。瓊脂糖分為一般瓊脂糖和經化學修飾后熔點降低的低熔點瓊脂糖,瓊脂糖的熔點在62-65°C之間,融化后在37°C下可維持液態數小時,30°C時凝固成膠。多用于對染色體DNA在凝膠內進行原位酶切及DNA的片段回收。瓊脂糖凝膠 由于孔徑大常用于大分子蛋白質、

    DNA重組技術(DNA Recombination)

    一、DNA 的酶切與連接(1)酶切反應:同質粒DNA 的鑒定,只不過是質粒DNA 換為載體DNA 。若大量酶切,則成比例增加。(2)加2倍體積的預冷無水乙醇和1/10體積的3mol/l NaAc混勻,-20℃2h以上。(3)15000rpm離心15min,棄上清。(4)加入75%乙醇洗滌2次,離心棄

    單鏈DNA文庫的SELEX篩選實驗

                實驗方法原理 SELEX 技術除了可以使用 RNA 文庫以外,還可以使用單鏈 DNA 文庫進行篩選。單鏈 DNA 形成高級結構的豐富性也足夠用于對許多靶分子的篩選,而且 DNA 文庫

    DNA凝膠電泳(DNA agarose gel electrophoresis)

    實驗原理瓊脂糖凝膠電泳是常用的用于分離、鑒定DNA、RNA分子混合物的方法,這種電泳方法以瓊脂凝膠作為支持物,利用DNA分子在泳動時的電荷效應和分子篩效應,達到分離混合物的目的。DNA分子在高于其等電點的溶液中帶負電,在電場中向陽極移動。在一定的電場強度下,DNA分子的遷移速度取決于分子篩效應,即分

    DNA酶切及凝膠電泳(gel electrophoresis)-2

    三、試劑 1、5×TBE電泳緩沖液:配方見第一章。 2、6×電泳載樣緩沖液:0.25% 溴粉藍,40%(w/v) 蔗糖水溶液,貯存于 4℃。 3、溴化乙錠(EB)溶液母液:將EB配制成10mg/ml,用鋁箔或黑紙包裹容器,儲于 室溫即可。 第三節 操作步驟 一、

    DNA酶切及凝膠電泳實驗原理、儀器試劑和操作步驟

    【實驗原理】DNA分子在瓊脂糖凝膠中泳動時有電荷效應和分子篩效應。DNA分子在高于等電點的pH溶液中帶負電荷在電場中向正極移動。由于糖-磷酸骨架在結構上的重復性質,相同數量的雙鏈DNA幾乎具有等量的凈電荷,因此他們能以相同的速度向正極方向移動。在一定的電場強度下,DNA 分子的遷移速度取決于分子

    DNA酶切及凝膠電泳

    實驗概要本文介紹了DNA酶切及凝膠電泳的實驗原理、儀器試劑和操作步驟等。實驗原理DNA分子在瓊脂糖凝膠中泳動時有電荷效應和分子篩效應。DNA分子在高于等電點的pH溶液中帶負電荷在電場中向正極移動。由于糖-磷酸骨架在結構上的重復性質,相同數量的雙鏈DNA幾乎具有等量的凈電荷,因此他們能以相同的速度向正

    DNA酶切反應

    一、 DNA 酶切反應1、將清潔干燥并經滅菌的eppendorf管(最好0.5ml)編號,用微量移液槍分別加入DNA 1μg和相應的限制性內切酶反應10×緩沖液2μl,再加入重蒸水使總體積為19μl,將管內溶液混勻后加入1μl酶液,用手指輕彈管壁使溶液混勻,也可用微量離心機甩一下,使溶液集中在管

    DNA限制性酶切及凝膠電泳,實驗原理及方法-3

    二、DNA分子量標準的制備采用EcoRⅠ或HindⅢ酶解所得的λDNA片段來作為電泳時的分子量標準。λDNA為長度約50kb的雙鏈DNA分子,其商品溶液濃度為0.5mg/ml,酶解反應操作如上述。HindIII切割 DNA后得到8個片段,長度分別為23.1, 9.4, 6.6, 4.4, 2.3,

    DNA酶切

    一、 DNA酶切反應   1、 將清潔干燥并經滅菌的eppendorf管(最好0.5ml)編號,用微量移液槍分別加入DNA 1μg和相應的限制性內切酶反應10×緩沖液2μl,再加入重蒸水使總體積為19μl,將管內溶液混勻后加入1μl酶液,用手指輕彈管壁使溶液混勻,也可用微量離心機甩一下,使

    瓊脂糖凝膠的制備

    ]瓊脂糖凝膠的制備1、 取5×TBE 緩沖液20ml 加水至200ml,配制成0.5×TBE 稀釋緩沖液,待用。2、 膠液的制備:稱取0.4g 瓊脂糖,置于200ml 錐形瓶中,加入50ml 0.5×TBE 稀釋緩沖液,放入微波爐里(或電爐上)加熱至瓊脂糖全部熔化,取出搖勻,此為0.8%瓊脂糖凝膠液

    核酸電泳實驗

    瓊脂糖凝膠電泳是分離鑒定和純化DNA片段的標準方法。該技術操作簡便快速,可以分辨用其它方法(如密度梯度離心法)所無法分離的DNA片段。當用低濃度的熒光嵌入染料溴化乙啶EB(德元國際Cat# LY5009)染色,在紫外光下至少可以檢出1-10ng的DNA條帶,從而可以確定DNA片段在凝膠中的位置。此外

    瓊脂糖凝膠電泳的原理及實驗過程

      實驗原理    瓊脂糖凝膠電泳常用于分離、鑒定 DNA、RNA 分子混合物,以瓊脂凝膠作為支持物,利用 DNA 分子在電場中時的電荷效應和分子篩效應,達到分離混合物的目的。DNA 分子在高于其等電點的溶液中帶負電,在電場中由陰極向陽極運動。在一定的電場強度下,忽略DNA分子攜帶的電荷,DNA

    瓊脂糖凝膠電泳的原理及實驗過程

      實驗原理   瓊脂糖凝膠電泳常用于分離、鑒定 DNA、RNA 分子混合物,以瓊脂凝膠作為支持物,利用 DNA 分子在電場中時的電荷效應和分子篩效應,達到分離混合物的目的。DNA 分子在高于其等電點的溶液中帶負電,在電場中由陰極向陽極運動。在一定的電場強度下,忽略DNA分子攜帶的電荷,DNA 分

    單鏈DNA文庫的SELEX篩選實驗

    單鏈DNA文庫的SELEX篩選實驗可用于:(1)體外診斷;(2)體內治療等。實驗方法原理SELEX 技術除了可以使用 RNA 文庫以外,還可以使用單鏈 DNA 文庫進行篩選。單鏈 DNA 形成高級結構的豐富性也足夠用于對許多靶分子的篩選,而且 DNA 文庫具有更好的穩定性,操作也相對簡便。實驗材料3

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