實驗概要
本實驗以水稻幼苗(禾本科)、李(蘋果)葉子為材料,學習基因組DNA提取的一般方法。
實驗原理
基因組DNA的提取通常用于構建基因組文庫、Southern雜交(包括RFLP)及PCR分離基因等。利用基因組DNA較長的特性,可以將其與細胞器或質粒等小分子DNA分離。加入一定量的異丙醇或乙醇,基因組的大分子DNA即沉淀形成纖維狀絮團飄浮其中,可用玻棒將其取出,而小分子DNA則只形成顆粒狀沉淀附于壁上及底部,從而達到提取的目的。在提取過程中,染色體會發生機械斷裂,產生大小不同的片段,因此分離基因組DNA時應盡量在溫和的條件下操作,如盡量減少酚/氯仿抽提、混勻過程要輕緩,以保證得到較長的DNA。一般來說,構建基因組文庫,初始DNA長度必須在100kb以上,否則酶切后兩邊都帶合適末端的有效片段很少。而進行RFLP和PCR分析,DNA長度可短至50kb,在該長度以上,可保證酶切后產生RFLP片段(20kb以下),并可保證包含PCR所擴增的片段(一般2kb以下)。
不同生物(植物、動物、微生物)的基因組DNA的提取方法有所不同; 不同種類或同一種類的不同組織因其細胞結構及所含的成分不同,分離方法也有差異。在提取某種特殊組織的DNA時必須參照文獻和經驗建立相應的提取方法,以獲得可用的DNA大分子。尤其是組織中的多糖和酶類物質對隨后的酶切、PCR反應等有較強的抑制作用,因此用富含這類物質的材料提取基因組DNA時,應考慮除去多糖和酚類物質。
主要試劑
1. 提取緩沖液Ⅰ:100mmol/L Tris·Cl,pH8.0,20mmol/L EDTA,500mmol/L NaCl,1.5% SDS。
2. 提取緩沖液Ⅱ:18.6g葡萄糖,6.9g二乙基二硫代碳酸鈉,6.0gPVP,240ul巰基乙醇,加水至300ml。
3. 80:4:16/氯仿:戊醇:乙醇
4. RnaseA母液
5. 其它試劑:液氮、異丙醇、TE緩沖液,無水乙醇、70%乙醇、3mol/L NaAc。
主要設備
1. 移液器
2. 冷凍高速離心機
3. 臺式高速離心機
4. 水浴鍋
5. 陶瓷研缽
6. 50ml離心管(有蓋)及5ml和1.5ml離心管
7. 彎成鉤狀的小玻棒
實驗材料
水稻幼苗或其它禾本科植物,李(蘋果)幼嫩葉子。
實驗步驟
1. 在50ml離心管中加入20ml提取緩沖液Ⅰ,60℃水浴預熱。
2. 水稻幼苗或葉子5-10g,剪碎,在研缽中加液氮磨成粉狀后立即倒入預熱的離心管中,劇烈搖動混勻,60℃水浴保溫30-60分鐘(時間長,DNA產量高),不時搖動。
3. 加入20ml氯仿/戊醇/乙醇溶液,顛倒混勻(需帶手套,防止損傷皮膚),室溫下靜置5-10分鐘,使水相和有機相分層(必要時可重新混勻)。
4. 室溫下5000rpm離心5分鐘。
5. 仔細移取上清液至另一50ml離心管,加入1倍體積異丙醇,混勻,室溫下放置片刻即出現絮狀DNA沉淀。
6. 在1.5ml eppendorf中加入1ml TE。用鉤狀玻璃棒撈出DNA絮團,在干凈吸水紙上吸干,轉入含TE的離心管中,DNA很快溶解于TE。
7. 如DNA不形成絮狀沉淀,則可用5000rpm離心5分鐘,再將沉淀移入TE管中。這樣收集的沉淀,往往難溶解于TE,可在60℃水浴放置15分鐘以上,以幫助溶解。
8. 將DNA溶液3000rpm離心5分鐘,上清液倒入干凈的5ml離心管。
9. 加入5μl RNaseA(10μg/μl),37℃ 10分鐘,除去RNA(RNA對DNA的操作、分析一般無影響,可省略該步驟)。
10. 加入1/10體積的3mol/L NaAc及2×體積的冰乙醇,混勻,-20℃放置20分鐘左右,DNA形成絮狀沉淀。
11. 用玻棒撈出DNA沉淀,70%乙醇漂洗,再在干凈吸水紙上吸干。
12. 將DNA重溶解于1ml TE,-20貯存。
13. 取2μl DNA樣品在0.7% Agarose膠上電泳,檢測DNA的分子大小。同時取15μl稀釋20倍,測定OD260/OD280,檢測DNA含量及質量。
注意事項
5g樣品可保證獲得500μg DNA,足供RFLP、PCR等分析之用。
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