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  • 發布時間:2019-03-28 11:32 原文鏈接: 模板DNA的準備、實驗的組織和PCR擴增實驗

    可以用各種方法分離基因組 DNA, 主要決定于初始材料的種類(血液還是組織)和數量。所有制備的 DNA 都應該儲存于 pH8.0 的 TE 緩沖液中并裝在滅菌的 Eppendorf 管內。本實驗來源于 PCR 實驗指南(第二版),作者:種康,瞿禮嘉。

    試劑、試劑盒

    PCR 緩沖液ddH20基因組 DNAdNTP寡核苷酸引物

    儀器、耗材

    離心機和轉子丙烯酸防護板過濾阻擋吸頭多道移液器PCR 儀托盤 固定器裝置底座管蓋小管

    實驗步驟

    一、材料

    1. 緩沖液、溶液和試劑

    含 15 mmol/LMgCl2 的 10XPCR 緩沖液 (GeneAmpPCR 緩沖液 I,AppliedBiosystems)

    滅過菌的 ddH20

    2. 酶和酶緩沖液

    TaqDNA 聚合酶,(AppliedBiosystems 或 Invitrogen)

    3. 核酸和寡核苷酸

    基因組 DNA

    10 mmol/L dNTP(GeneAmpPCRdNTP 混合物,AppliedBiosystems)

    寡核苷酸引物(Invitrogen 公司合成,稀釋成 lOumol/L)

    4. 離心機和轉子

    用翻轉吊桶式轉子和微板適配器離心

    5. 專用設備

    丙烯酸防護板(acrylicshield)

    過濾阻擋吸頭(filterbarriertips)

    多道移液器(Eppendorf 或 ApogentDiscoveries)

    PCR 儀,96 孔(AppliedBiosystemsGeneAmp9700)

    托盤/固定器裝置和底座,96 孔(AppliedBiosystems)

    管蓋,一條 8 個(USAScientific 或 AppliedBiosystems)

    小管,0.2 ml,一條 8 個(USAScientific 或 AppliedBiosystems)

    二、方法

    1. 在冰上融化 dNTP、10XPCR 緩沖液和未標記的引物。Taq 酶在加入反應混合物之前應保存在-20°C。在丙烯酸防護板后融化標記的引物。

    2. 每一個反應的混合物包括:

    滅菌 ddH20                                       6.95ul

    含 MgCl2 的 10XPCR 緩沖液            1.25ul

    10mmol/LdNTP                                  0.25ul

    10mmol/L 未標記引物                        0.5ul

    標記引物                                            0.5ul

    在優化實驗條件過程中,如果 PCR 產物的放射信號強度太低,可以增加標記引物的用量,同時按相應

    比例調整 ddH20 的體積。

    TaqDNA 聚合酶(終濃度為 0.25U)     0.05ul

    對于一個 96 孔微孔板,準備用于 100 個反應的混合物。

    3. 混勻,按等份加入放置在冰上的 PCR 板中(9.5ul/樣品)。

    4. 用多道移液器加入 3ulDNA(60ng),混勻。

    5. 把蓋子蓋緊,將板放入預熱到 94°C 的 PCR 儀中。

    6. 如果產物大小是 200bp, 擴增 30 個循環。循環參數如下:94°C 初始變性 5 min;30個循環的 94°C 變性 30s; 根據經驗確定的退火溫度(Tm) 退火 30s;72°C 延伸 30s。最后一步 72°C 延伸 7 min。值可以通過引物序列計算出來,公式為 2(A+T)+4(G+C)。

    7. 擴增完成后,將樣品于-20°C 凍存,或者直接進入方案 3。


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