海底蛋白愛“吃光”
組尋找“吃光”蛋白質的科學家，在加利利海海底偶然發現了50年來的第一個新品種。這種蛋白質可幫助植物和微生物從太陽中獲取光的細胞成分。這一意想不到的發現可幫助研究人員更好地了解微生物是如何感知光線的，并促進新型光學研究以及數據存儲技術的發展。 許多生物利用光敏蛋白質收集太陽的能量，并幫助其生存。它們中一些利用葉綠素通過光合作用轉化陽光，其他一些則使用視紫質，這種蛋白質與一種被稱為視黃醛的維生素A結合，可以捕獲光線。最著名的視紫質嵌在人眼的視桿細胞中，它幫助人們在黑暗中看清東西。但另一種形式的視紫質則幫助小生物（如藻類和細菌）吸收光以制造化學能。 研究人員在收集來自以色列加利利海的DNA樣本時，嘗試尋找第二種視紫質。回到實驗室后，研究人員對DNA樣本進行了篩選，尋找編碼光反應蛋白的基因。當他們將視黃醛添加到大腸桿菌時，它變成了紫色——這是視紫質可能存在的跡象。《科學》雜志近日報道稱，研究小組表示，當他們進一步測試DNA時，發......閱讀全文
結合DNA的蛋白質
結構蛋白可與DNA結合，是非專一性DNA-蛋白質交互作用的常見例子。染色體中的結構蛋白與DNA組合成復合物，使DNA組織成緊密結實的染色質構造。對真核生物來說，染色質是由脫DNA與一種稱為組織蛋白的小型堿性蛋白質所組合而成；而原核生物體內的此種結構，則摻雜了多種類型的蛋白質。DNA可在組織蛋白的表面
DNA的主要功能結合DNA的蛋白質
結構蛋白可與DNA結合，是非專一性DNA-蛋白質交互作用的常見例子。染色體中的結構蛋白與DNA組合成復合物，使DNA組織成緊密結實的染色質構造。對真核生物來說，染色質是由脫DNA與一種稱為組織蛋白的小型堿性蛋白質所組合而成；而原核生物體內的此種結構，則摻雜了多種類型的蛋白質。DNA可在組織蛋白的表面
微生物檢測應用DNA探針法
在許多病原微生物的檢測上,常用的分離培養方法需要的時間較長,手續也較繁雜,而且病灶和糞便等病料含雜菌較多,阻礙病原微生物的檢出,不能快速做出診斷。免疫學方法也有許多不足之處,尤其是在持續性感染和感染潛伏期抗體尚未產生或不易檢測出抗體的情況下,即使有抗體存在也難以判斷。而應用核酸探針技術,就可以直接確
怎樣提取微生物的質粒（DNA）
堿提法：一、試劑準備1.溶液Ⅰ:50mM葡萄糖,25mM Tris-HCl(pH 8.0),10mM EDTA(pH 8.0）.1M Tris-HCl(pH 8.0）12.5ml,0.5M EDTA（pH 8.0）10ml,葡萄糖4.730g,加ddH2O至500ml.在10 lbf/in2高壓滅菌
腸道微生物DNA的提取方法
實驗概要腸道微生物DNA是進行微生物分子生態學研究的前提。能否獲得高的DNA提取率和高質量的DNA，從而真實地反映微生物群落的實際情況，是保障研究結果是否可靠的關鍵。如何獲取高質量、較完整的腸道菌群基因組DNA是腸道微生物研究中的關鍵。本研究采用物理方法，化學方法，酶解法等進行DNA提取，并對其進行
單細胞蛋白質的微生物
生產單細胞蛋白質的微生物種類很多，有酵母菌、細菌、霉菌和擔子菌等。 糖質原料：酵母屬和假絲酵母屬為主要生產菌。 正烷烴：假絲酵母為最主要利用菌。 甲烷：能利用甲烷作為唯一碳源的微生物，主要是細菌，如甲烷假單胞菌等。 甲醇：主要以細菌為主，放線菌、酵母菌和霉菌次之。甲烷利用菌也為甲醇利用菌
TRIzol法同時提取RNA、DNA、蛋白質
TRIzol試劑適用于從細胞和組織中快速分離RNA。TRIzol試劑有多組分分離作用，與其他方法如硫氰酸胍/酚法、酚/SDS法、鹽酸胍法、硫氰酸胍法等相比，最大特點是可同時分離一個樣品的RNA\DNA\蛋白質.TRIzol使樣品勻漿化，細胞裂解，溶解細胞內含物，同時因含有RNase抑制劑可保持RNA
TRIzol法同時提取RNA、DNA、蛋白質
TRIzol試劑適用于從細胞和組織中快速分離RNA。TRIzol試劑有多組分分離作用，與其他方法如硫氰酸胍/酚法、酚/SDS法、鹽酸胍法、硫氰酸胍法等相比，最大特點是可同時分離一個樣品的RNA\DNA\蛋白質.TRIzol使樣品勻漿化，細胞裂解，溶解細胞內含物，同時因含有RNase抑制劑可保持RNA
微生物是怎樣生產蛋白質的
生物學家告訴我們：蛋白質是生命活動的物質基礎，一切動植物的體內都有蛋白質。動植物這些顯眼的“大生物”含有蛋白質，那些肉眼難見的“小不點兒”微生物，是否也應有蛋白質的成分呢？是的，微生物雖小，也有蛋白質成分。由于微生物大多是很小很小的單細胞生物，因而人們生產出來的蛋白質，叫作“單細胞蛋白”。單細胞蛋白
DNA提取：為微生物研究掃清障礙
近年來，盡管測序技術在快速發展，但DNA提取方法卻鮮有改進。對于宏基因組研究，這是必需的一步。然而，許多微生物無法在實驗室中培養，這成為分析大量微生物樣品的一個主要瓶頸。參與美國NIH的人類微生物組計劃(Human Microbiome Project)以及地球微生物組計劃(Earth Mi
單細胞DNA測序揭示微生物“暗物質”
據《自然》雜志網站7月14日(北京時間7月15日)報道，天文學家們認為，宇宙總物質量的23%由彌漫于其間且肉眼看不見的“暗物質”組成;現在，美國科學家進行了微生物“暗物質”研究，他們用單細胞DNA測序技術對多種微生物的基因組進行測序后發現，微生物遠比我們所知道的要豐富多樣，研究同時揭示了不同物種
土壤微生物總DNA提取及純化
實驗概要從土壤微生物中提取總DNA并純化，高質量的DNA可用于后續文庫構建。主要試劑TENP緩沖液(50 mmol/L Tris, 20 mmol/L EDTA, 100 mmol/L NaCl, 1% PVP, pH 10.0)PBS緩沖液(137 mmol/L NaCl, 2.7 mmol/L
脫氧核糖核酸DNA結合DNA的蛋白質的介紹
結構蛋白可與DNA結合，是非專一性DNA-蛋白質交互作用的常見例子。染色體中的結構蛋白與DNA組合成復合物，使DNA組織成緊密結實的染色質構造。對真核生物來說，染色質是由脫DNA與一種稱為組織蛋白的小型堿性蛋白質所組合而成；而原核生物體內的此種結構，則摻雜了多種類型的蛋白質。 DNA可在組織蛋
蛋白質如何阻止細胞攻擊自己的DNA
病毒通過將其DNA注入宿主細胞來繁殖。一旦進入細胞內液，這種異物就會觸發一種稱為cGAS-STING途徑的防御機制。蛋白質環狀GMP-AMP合酶(cGAS)也存在于液體中，它與入侵的DNA結合形成一個新分子。反過來，它與另一種稱為干擾素基因刺激物(STING)的蛋白質結合，從而誘導炎癥性免疫反應。?
TRIzol法同時提取RNA、DNA、蛋白質4
注意事項：1. DNA在中間層和有機相中時可在2～8℃保存過夜。2.DNA沉淀在75%乙醇中2～8℃可保存幾個月。3.DNA在8mM NaOH溶液中4℃可放置過夜，如長期保存需用HEPES調節pH至7～8并且加EDTA至1mM，可置于4℃或-20℃長期保存。常見問題分析：得率低：A.樣品勻漿和裂解的
TRIzol法同時提取RNA、DNA、蛋白質3
DNA污染：A. 樣品勻漿時加的試劑量太少。B.樣品中含有有機溶劑（如乙醇，DMSO等），強緩沖液或堿性溶液。蛋白聚糖和多糖污染：沉淀RNA的過程中作以下改進可去除這些污染，步驟7中，每使用1ml TRIzol在水相中加0.25ml異丙醇和0.25ml高鹽溶液（0.8M檸檬酸鈉和1.2MNaCl）混
TRIzol法同時提取RNA、DNA、蛋白質（一）
TRIzol試劑適用于從細胞和組織中快速分離RNA。TRIzol試劑有多組分分離作用，與其他方法如硫氰酸胍/酚法、酚/SDS法、鹽酸胍法、硫氰酸胍法等相比，最大特點是可同時分離一個樣品的RNA\DNA\蛋白質.TRIzol使樣品勻漿化，細胞裂解，溶解細胞內含物，同時因含有RNase抑制劑可保持RNA
TRIzol法同時提取RNA、DNA、蛋白質（二）
DNA的分離準備試劑：乙醇0.1M檸檬酸鈉（含10%乙醇）、 75%乙醇、8mM NaOH操作步驟：1. 樣品加氯仿分層后，移去上層水相，用乙醇沉淀中間層和有機相中的DNA。每使用1mlTRIzol加0.3ml無水乙醇混勻，室溫放置3分鐘，2～8℃不超過2000×g離心5分鐘。2. 移去上清，（如需
TRIzol法同時提取RNA、DNA、蛋白質2
5. 2-8℃10000×g離心15分鐘。樣品分為三層：底層為黃色有機相，上層為無色水相和一個中間層。RNA主要在水相中，水相體積約為所用TRIzol試劑的60℅。6. 把水相轉移到新管中，如要分離DNA和蛋白質可保留有機相，進一步操作見后。用異丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1mlTRIzol加入0
單細胞蛋白質的微生物及用途
微生物 生產單細胞蛋白質的微生物種類很多，有酵母菌、細菌、霉菌和擔子菌等。 糖質原料：酵母屬和假絲酵母屬為主要生產菌。 正烷烴：假絲酵母為最主要利用菌。 甲烷：能利用甲烷作為唯一碳源的微生物，主要是細菌，如甲烷假單胞菌等。 甲醇：主要以細菌為主，放線菌、酵母菌和霉菌次之。甲烷利用菌也為
微生物DNA進行人體識別引發隱私擔憂
研究人員已經發現寄生于人體的微生物的聚集DNA，它又被稱為‘gut print’，可以唯一地識別某個人。但這引發了隱私問題。 研究結果于5月11日發表在《美國國家科學院院刊》上，表明它可能識別人體微生物棲息研究方面的匿名參與者。該微生物將會透露個人健康、飲食或種族方面的細節。4月29日發表在
土壤微生物DNA提純方法及純度檢測
實驗概要本實驗比較了聚乙烯基吡咯烷酮(PVP)和交聯聚乙烯基吡咯烷酮(PVPP)在DNA提取過程中的純化作用，并利用低電壓長時間電泳法及PVP電泳法對純化的DNA樣品進行了檢測。主要試劑DNA提取緩沖液(100 mmol/L Tris, 100 mmol/L EDTA, 100 mmol/L Na3
土壤微生物總DNA的提取方法比較
實驗概要通過對比不同DNA提取及純化方法，選擇和優化適合于土壤樣品不同分子量DNA提取及純化的技術路線。實驗原理土壤是微生物最大的棲息地，20世紀80年代，微生物學家采用免培養(culture-in-dependent)方法，即直接從土壤中提取微生物總DNA的技術，使得在基因水平研究這些未培養微生物
DNA－酶－I－足跡法對－DNA－上的蛋白質結合位點作圖實驗
實驗材料 新鮮組織、培養的細胞、來自細胞或組織的蛋白成分試劑、試劑盒 細胞勻漿緩沖液細胞重懸緩沖液細胞淋洗緩沖液乙醇Ficoll 400甲酰胺染色液MgCl2 CaCl2 溶液NaClNonidetP-40酚：氯仿磷酸鹽緩沖液聚乙烯醇終止液組織勻漿液組織重懸緩沖液臺盼藍染料DNA 酶 I
DNA－酶－I－足跡法對－DNA－上的蛋白質結合位點作圖實驗
DNA 酶 I 足跡法對 DNA 上的蛋白質結合位點作圖實驗 ? ? ? ? ? ? 實驗材料 新鮮組織、培養的細胞、來自細胞或組織的蛋白成分
DNA－酶－I－足跡法對－DNA－上的蛋白質結合位點作圖實驗
本方案介紹在放射性標記的 DNA 片段上確定蛋白質結合位點的作圖方法。本方案使用 DNA 酶 I 切割 DNA, 而在替代方案中是用羥自由基斷裂 DNA。如果希望得到優化足跡法反應的建議，請參見本方案最后部分的疑難解析以及優化 DNA 酶 I 足跡法反應的欄目。本實驗來源于分子克隆實驗指南（第三版）
Nature：用于蛋白質分析的單分子DNA技術
George Church 及同事開發出用于并行蛋白相互作用分析、借助用于蛋白功能分析的單分子DNA方法的一個“單分子相互作用測序”(SMI-seq)技術。 SMI-seq的工作原理是，通過核糖體顯示或酶結合將蛋白耦合到DNA識別符或“條碼”上。 這些條碼化的蛋白然后在水溶液中被一起分析，并
電泳如何在DNA和蛋白質上起作用
電泳在具有靜態pH的緩沖溶液中進行。電場施加到包含正端和負端的電泳室。如果被電泳物質的pH值低于周圍緩沖液，則會向正極遷移。如果該物質的pH值高于周圍的緩沖液，則會向負極遷移。物質以兩種不同的速率遷移：粒徑和總體電荷。遷移物質的pH值與周圍緩沖液的pH值之間的差異越大，物質越能通過凝膠遷移。大分子由
DNA蛋白質印跡法的技術應用
中文名稱DNA-蛋白質印跡法英文名稱Southwestern blotting定 義將經過電泳分離的蛋白質轉移到膜上再與某些特定序列的DNA片段相互作用，是研究蛋白質與DNA特異結合的技術。應用學科生物化學與分子生物學（一級學科），方法與技術（二級學科）
提取的DNA中含有蛋白質和RNA污染
提取的時候飽和酚，氯仿需要定量，這些可以去蛋白。去除RNA污染，RNA酶活性，定量。凝膠電泳，試劑最好是即用型的，因為有些東西放久了會長菌。然后是染料的熱穩定性和靈敏度。