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  • 流式細胞術檢測人和小鼠Th細胞亞群(二)

    2 不同濃度的PMA刺激后人T淋巴細胞CD4、CD8和CD3的表達。24孔細胞培養板中,每孔加入約5×105個細胞,加入RPMI 1640培養基至總體積1ml。加入不同濃度的PMA(10ng、20ng和50ng終濃度)和500ng/ml Ionomycin共同刺激人外周血單個核細胞,同時加入0.7μl Golgistop,37 ℃ CO2孵箱刺激4h。收集單個核細胞,分為三部分,分別加入CD8-CYC、CD4-CYC、CD3-APC單抗各10ul,室溫避光孵育30min。加入紅細胞裂解液(FACS Lysing Solution)1ml裂解殘余紅細胞,2ml PBS洗滌細胞一次。流式細胞儀(FACSCalibur,Becton Dickinson)檢測細胞,Cellquest軟件獲取分析細胞,每個檢測獲取10000個細胞。采用前向角(FSC)和側向角(SSC)散射光散點圖設門區分淋巴細胞,以直方圖分別表示CD......閱讀全文

    流式細胞術檢測人和小鼠Th細胞亞群(二)

    2 不同濃度的PMA刺激后人T淋巴細胞CD4、CD8和CD3的表達。24孔細胞培養板中,每孔加入約5×105個細胞,加入RPMI 1640培養基至總體積1ml。加入不同濃度的PMA(10ng、20ng和50ng終濃度)和500ng/ml Ionomycin共同刺激人外周血單個核細胞,同時加入

    流式細胞術檢測人和小鼠Th細胞亞群(四)

    從Rostaing等[2]發表流式細胞術檢細胞內細胞因子的方法后,陸續有人研究了流式細胞術檢測細胞內因子方法的可行性及重復性等問題。雖然活化T淋巴細胞有各種各樣的方法,如:PMA、PHA、Con A、CD3、CD2和CD28等。但是目前公認的較好的方法仍然是PMA和鈣離子載體的聯合刺激。研究

    流式細胞術檢測人和小鼠Th細胞亞群(三)

    2 不同時間的PMA刺激對小鼠外周血T淋巴細胞抗原表達的影響。PMA刺激8h后CD4陽性T淋巴細胞的表達沒有明顯下降。PMA刺激12h后,CD4陽性T淋巴細胞的表達明顯下降。而CD8表達在8h和12h均沒有明顯下降。典型的檢測結果見圖2。圖2 不同時間的PMA刺激對小鼠外周血T淋巴細胞抗原表達的影響

    流式細胞術檢測人和小鼠Th細胞亞群(一)

    早在1986年Mosmann等[1]依據小鼠分泌的細胞因子譜不同首次將Th細胞分為Th1和Th2兩個功能不同的獨立亞群。Th1細胞主要分泌IL-2、、IL-12、IFN-γ和TNF- α等細胞因子,介導與細胞毒和局部炎癥有關的免疫應答,參與細胞免疫及遲發型超敏反應。Th2細胞主要分泌IL-4、I

    流式細胞術檢測淋巴細胞亞群操作規程

    一、目的規范流式細胞術檢測淋巴細胞亞群的實驗操作。二、背景知識T細胞亞群變化的臨床意義主要表現在腫瘤、自身免疫性疾病中。在感染性疾病中,因為CD4+T細胞是輔助、誘導T細胞的標志,CD4+T細胞下降常見于某些病毒感染性疾病,如AIDS、巨細胞病毒感染、瘤型麻風。而CD4+T細胞長期低于正常水平,常提

    探究免疫細胞的家族成員Th亞群(二)

    04 Tr1?? 1997年,Groux等[7]發現了一類由IL-10誘導產生的新CD4+T亞群,該亞群能在體內抑制抗原特異性免疫反應并主動下調病理免疫應答,被稱之為Tr1細胞。因Tr1細胞不表達Foxp3而區別于經典的Treg。 IL-27和IL-21協同作用,激活 STA

    10.2流式細胞法の淋巴細胞亞群檢測(二)

    一.淋巴細胞亞群的臨床意義通過T淋巴細胞亞群的檢測可了解在不同情況下體內免疫功能狀態,輔助臨床疾病的診斷,探索疾病的發病機理、病程、預后,監測、指導臨床治療方案。二.淋巴細胞亞群的應用方向三.流淋巴細胞亞群

    流式細胞儀三色法檢測外周血Th細胞亞群培養方案的研究

      摘 要:目的 改進流式細胞儀三色法檢測外周血Th細胞亞群的刺激培養方案。  方法 外周全血經RPMI1640培養液和終濃度為25μg/L的PMA、1 mg/L的Ionomycin、20μg/的Monensin培養2 h后,用流式細胞儀分別檢測CD4、CD69陽性細胞及CD3陽性細胞表達IFN-γ

    流式細胞儀三色法檢測外周血Th細胞亞群培養方案的研究

      摘 要:目的 改進流式細胞儀三色法檢測外周血Th細胞亞群的刺激培養方案。  方法 外周全血經RPMI1640培養液和終濃度為25μg/L的PMA、1 mg/L的Ionomycin、20μg/的Monensin培養2 h后,用流式細胞儀分別檢測CD4、CD69陽性細胞及CD3陽性細胞表達IFN-γ

    流式細胞術急性分離小鼠小膠質細胞

    實驗步驟1. 小鼠用pH值7.4,0.1M PBS徹底穿心灌注。2. 用剪刀去頭。3. 剝開頭骨的軟組織。4. 除去下頜骨。5. 除去頭骨延髓到上頜骨之間的組織。6. 手術剪刀,取出頭骨頂部,順時針方向切割,開始和結束于右后鼓膜鉤。7. 舀出大腦,維持組織的完整性。8. 立即將腦組織置于預冷的流式細

    流式細胞術急性分離小鼠小膠質細胞

    實驗概要本文主要講述了:從成年小鼠腦中分離單細胞,制成單細胞懸液,我們一個單細胞分離成單細胞懸液,除去髓鞘碎片,然后染色標記,以確定小膠質細胞的成分。細胞被固定,在多色流式細胞儀上讀取。實驗步驟1. 小鼠用pH值7.4,0.1M PBS徹底穿心灌注。 2. 用剪刀去頭。 3. 剝開頭骨的軟組織。 4

    流式細胞術檢測細胞凋亡

    實驗概要Provides a rapid and convenient assay for apoptosis.?實驗原理Apoptosis ?is a carefully regulated process of cell death that occurs as a normal ?part o

    流式細胞術分析外周血淋巴細胞亞群在兒科的臨床

    背景流式細胞術檢測T、B、NK淋巴細胞亞群已較為廣泛的應用于兒科臨床許多疾病涉及兒童相應免疫功能異常臨床工作中更有效的理解和應用流式細胞術以評估兒童的免疫狀況,指導疾病的診斷、治療還缺乏系統的學習材料尤其是臨床一線的兒科醫務工作者對流式細胞術的臨床應用更有待進一步加強認識和學習。檢測對象原則:免疫功

    探究免疫細胞的家族成員Th亞群(一)

    CD4+?T細胞是一群高度異質性細胞,自1986年Mosmann等揭開了Th1、Th2亞群的神秘面紗后,其他科學家又陸續發掘了Th3、Treg、Tr1、Tfh、Th17、Th9和Th22等CD4+?輔助性T(Th)細胞亞群。Th各亞群之間相互協調,共同發揮免疫調節作用,維持機體穩態。Th細胞亞群比例

    流式細胞術檢測細胞的原理

    流式細胞術檢測細胞的原理主要包括以下幾個方面:細胞懸液制備:將待檢測的細胞制成單細胞懸液。熒光標記:使用特異性的熒光染料或熒光標記的抗體與細胞內或細胞表面的特定成分結合。流體動力學聚焦:細胞懸液被壓力驅動進入流動室,在鞘液的包裹下,細胞逐一排列成單列,以極快的速度逐個通過檢測區。激光照射:當細胞通過

    流式細胞術應用-|-小鼠脾細胞表型分析簡便操作

    實驗簡介脾臟是機體最大的免疫器官,含有大量的淋巴細胞和巨噬細胞,是機體細胞免疫和體液免疫的中心,ft 機體免疫失衡時,免疫細胞的數量和比例都會發生變化,流式細胞儀能夠直接檢測出該變化的發生。該實驗通過一個優化設計的 8 色方案,檢測出了小鼠脾臟中 T、B 細胞亞群以及 FOXp3 的表達,從圖中可以

    流式細胞術應用-|-小鼠脾細胞表型分析簡便操作

    實驗簡介脾臟是機體最大的免疫器官,含有大量的淋巴細胞和巨噬細胞,是機體細胞免疫和體液免疫的中心,ft 機體免疫失衡時,免疫細胞的數量和比例都會發生變化,流式細胞儀能夠直接檢測出該變化的發生。該實驗通過一個優化設計的 8 色方案,檢測出了小鼠脾臟中 T、B 細胞亞群以及 FOXp3 的表達,從圖中可以

    流式細胞術的檢測原理

    流式細胞術的檢測原理主要基于以下幾個方面:液流系統:細胞樣本被制成單細胞懸液,通過一定壓力被注入流動室,在鞘液的包裹下,細胞排成單列,逐個快速通過激光檢測區。光學系統:通常使用氬離子激光器或其他類型的激光器作為光源。激光照射到細胞后,會產生散射光和熒光。前向散射光(FSC):與細胞的大小有關,反映細

    什么是流式細胞術檢測

    又稱熒光激活細胞分選法,一種細胞分選或分析技術。即以熒光素標記抗體結合相應細胞,用激光束激發單行流動的細胞,根據細胞所攜帶熒光(強度或類別)進行分選或分析。

    什么是流式細胞術檢測

    又稱熒光激活細胞分選法,一種細胞分選或分析技術。即以熒光素標記抗體結合相應細胞,用激光束激發單行流動的細胞,根據細胞所攜帶熒光(強度或類別)進行分選或分析。

    10.2流式細胞法の淋巴細胞亞群檢測(一)

    淋巴細胞亞群檢測 今天小編分享的是第10.2部分,流式細胞法淋巴細胞檢測。淋巴細胞亞群節選《淋巴細胞亞群和流式細胞術》節選《流式細胞術檢測外周血淋巴細胞亞群指南》來源于骨髓的淋巴樣干細胞,在胸腺中成熟的淋巴細胞,故稱胸腺依賴性淋巴細胞(thymus-dependentlymphocyte)

    10.2流式細胞法の淋巴細胞亞群檢測(四)

    檢測對象選擇原則上免疫功能受損者均應常規評估淋巴細胞亞群。(一)免疫防御功能受損者易發生感染,這種感染的特點是反復、嚴重、多種病原體或特殊病原體的感染,以及常規治療效果不佳的感染。1.反復感染:感染次數和頻率過高,超出正常人群,因感染的部位不同,具體反復的次數或頻率難以給出參考標準舊。2.嚴重感染:

    10.2流式細胞法の淋巴細胞亞群檢測(三)

    四.流式細胞亞群的臨床指南(節選)五.流式細胞亞群兒科臨床應用共識(節選)

    流式細胞術檢測細胞的應用介紹

    流式細胞術檢測細胞的結果在以下眾多研究領域都有廣泛應用:免疫學:分析免疫細胞的表型,如 T 細胞、B 細胞、NK 細胞等表面標志物的表達,評估免疫細胞的活化狀態和分化階段。檢測細胞因子的分泌,研究免疫細胞的功能。進行免疫細胞的分選,用于后續的功能研究或細胞治療。腫瘤學:腫瘤細胞的鑒定和分型,檢測腫瘤

    流式細胞檢測

    技術原理?????? 流式細胞技術(flow cytometry,FCM)是利用流式細胞儀進行的一種單細胞定量分析和分選技術。是一種在液體系統中,測定單個細胞或細胞器的生物、物理和化學特性,并根據這些特性將所需要的細胞或細胞器進行定量分析和分選的技術。它是一種可以檢測細胞或者生物學顆粒的多種特性的技

    流式細胞術

    一.?流式細胞術概述流式細胞術(Flow?Cytometry,?FCM)是七十年代發展起來的高科學技術,它集計算機技術、激光技術、流體力學、細胞化學、細胞免疫學于一體,?同時具有分析和分選細胞功能。它不僅可測量細胞大小、內部顆粒的性狀,還可檢測細胞表面和細胞漿抗原、細胞內DNA、RNA含量等,可對

    流式細胞術檢測細胞的原理是什么?

    流式細胞術檢測細胞的原理主要包括以下幾個方面:細胞懸液制備:將待檢測的細胞制成單細胞懸液。熒光標記:使用特異性的熒光染料或熒光標記的抗體與細胞內或細胞表面的特定成分結合。流體動力學聚焦:細胞懸液被壓力驅動進入流動室,在鞘液的包裹下,細胞逐一排列成單列,以極快的速度逐個通過檢測區。激光照射:當細胞通過

    流式細胞術檢測樣品推薦制備方法

    A. 直接標記抗體(FITC標記抗體):(1) 收集1×106個細胞,800rpm離心5min,4℃以上冷PBS洗一次。(2) 用4%多聚甲醛1ml室溫固定40分鐘,800rpm離心5min去上清。加2ml PBS重懸洗滌細胞,800rpm離心5min。(3) 用1ml含5% 人血清的 PBS 重懸

    流式細胞術的檢測原理是什么?

    流式細胞術的檢測原理主要基于以下幾個方面:液流系統:細胞樣本被制成單細胞懸液,通過一定壓力被注入流動室,在鞘液的包裹下,細胞排成單列,逐個快速通過激光檢測區。光學系統:通常使用氬離子激光器或其他類型的激光器作為光源。激光照射到細胞后,會產生散射光和熒光。前向散射光(FSC):與細胞的大小有關,反映細

    流式細胞術的檢測樣本有哪些?

    流式細胞術的檢測樣本類型多樣,常見的包括:外周血:包括全血或經過分離處理的白細胞。骨髓:常用于血液系統疾病的診斷和監測。組織細胞懸液:例如實體瘤組織經過酶消化處理后制成的單細胞懸液。培養細胞:如細胞系、原代培養細胞等。腦脊液:可用于檢測其中的免疫細胞或腫瘤細胞。胸水、腹水:分析其中的細胞成分,輔助診

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