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  • 蛋白質純化所需的生物提取物制備的實驗(三)

    四、細胞裂解的流程、試劑和技巧下文所述的以細胞提取物的產品質量為出發點的各種策略和指導方針適用于大多數下游純化及分析過程。盡管介紹的重點是在小規模或較大的實驗室規模的大腸桿菌裂解上,但是一些技術還是可以用于其他來源的細胞裂解和細胞內蛋白質提取,并且是可以放大的。廣泛的蛋白質純化方面的文獻為這里列出的一些蛋白質提取物制備方針及蛋白質純化和鑒定提供了補充信息 (Burgess,1987;Deutscher,1990;HarrisandAngal,1989;Hopkins,1991;Marshaketal.,1996;Scopes,1994)。緩沖液成分細胞裂解緩沖液的成分和體積不僅對細胞的有效裂解至關重要,而且還將影響隨后的純化過程及目標蛋白質從細胞中釋放出來后的穩定性和回收率。每種提取的蛋白質都是獨特的,理論上應該有一種與其自身的生化性質和預期的純化流程都相適應的提取及純化的緩沖液存在。在大多數的案例中,如果幾個基本條件符......閱讀全文

    細胞和亞細胞提取物的制備實驗7

    方案7 從包含體中溶解大腸桿菌重組蛋白實驗實驗方法原理由于分子克隆技術能夠使細菌高水平表達蛋白,因此原核表達是一個非常便利的獲得重組蛋白的系統。遺憾的是這些蛋白在細菌中易于聚合和沉淀,形成難溶解的包含體,因而很難純化。非細菌蛋白的包含體尤其普遍。雖然沒有一種可用于所有蛋白的普適方法,還是有許多策略適

    細胞和亞細胞提取物的制備實驗6

    方案6 細菌中重組蛋白的大量提取實驗實驗方法原理利用細菌獲得用于純化的重組蛋白是非常方便的。適用于細菌細胞蛋白提取的方法包括超聲波處理、玻璃珠研磨、釩土或石英砂研磨、French 加壓罐高壓剪切細胞和溶’菌酶處理。這些方法適用于從各種革蘭陰性菌和革蘭陽性菌中制備蛋白提取物。通常是使用酶的方法破壞細胞

    細胞和亞細胞提取物的制備實驗5

    方案5 細菌中重組蛋白的小量提取實驗實驗方法原理利用細菌獲得用于純化的重組蛋白是非常方便的。為了檢測誘導和重組蛋白的表達水平,評估方法的快速簡單是很重要的。本方案使用 0.5% TritonX-1OO 裂解細胞,小量制備細菌提取物。實驗材料表達目標重組蛋白的細菌細胞試劑、試劑盒二硫蘇糖醇(DTT)樣

    細胞和亞細胞提取物的制備實驗4

    方案4 氮艙減壓法裂解培養細胞實驗實驗方法原理通過來自增壓艙中的氮氣減壓膨脹來破碎細胞是一種快速、有效的細胞和組織的勻漿方法,能釋放完整的細胞器和制備細胞膜(Hunter and Commerford,1961)。該方法的原理很簡單:細胞放在一個壓力艙中,在高壓下(約5500kPa,相當于800ps

    細胞和亞細胞提取物的制備實驗2

    方案2 用于免疫沉淀的培養細胞的裂解實驗實驗方法原理培養的動物細胞一般使用溫和去垢劑來裂解。如果低濃度的去垢劑就能引起細胞的充分裂解(如 l%NP-40 或 l%Triton X-100),那么這對目標蛋白的影響可能比方案 1 中所討論的勻漿方法更溫和。去垢劑的選擇必須根據免疫沉淀所用的抗體的識別表

    細胞和亞細胞提取物的制備實驗9

    實驗方法原理差異去垢劑分離法(differential detergent fractionation, DDF) 包括使用一系列含不同去垢劑的 PIPES 緩沖液對細胞進行連續抽提,首先是毛地黃皂苷,其次是 Triton, 最后是 Tween/脫氧膽酸鹽。這些步驟產生 4 種在生化和電泳上相異的組

    制備和純化-mRNA-顯示蛋白實驗

    實驗方法原理 實驗材料 DNA 庫不含甲硫氨酸的翻譯混合物試劑、試劑盒 MgCl2核苷三磷酸溶液轉錄緩沖液去離子超濾水T7 RNA 聚合酶固體 EDTA尿素緩沖液NaCl乙醇EDTAATPT4 多核苷酸激酶緩沖液T4 多核苷酸激酶T4 DNA 連接酶緩沖液T4 DNA 連接酶乙酸鉀溶液兔網織

    制備和純化-mRNA-顯示蛋白實驗

    基本方案 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 實驗材料 DNA 庫 不含甲硫氨酸的翻譯混合物

    制備和純化-mRNA-顯示蛋白實驗

    實驗材料DNA 庫不含甲硫氨酸的翻譯混合物試劑、試劑盒MgCl2核苷三磷酸溶液轉錄緩沖液去離子超濾水T7 RNA 聚合酶固體 EDTA尿素緩沖液NaCl乙醇EDTAATPT4 多核苷酸激酶緩沖液T4 多核苷酸激酶T4 DNA 連接酶緩沖液T4 DNA 連接酶乙酸鉀溶液兔網織紅細胞裂解物翻譯試劑盒氯化

    如何采集制備實驗室所需土壤樣品?

    一、土壤樣品的采集土壤樣品的采集方法對最終的檢測結果與評價影響很大,采樣時的誤差往往比后續分析的測定誤差大很多。因而,必須嚴格按采樣規范操作,以保證土樣具有代表性,能正確真實地反映原采樣地塊的土壤情況。土樣采集的時間、地點、層次、方法、數量等都需由土樣的分析項目及檢測目的來決定。(1)采樣前的準備工

    細菌細胞的制備實驗實驗——多核糖體的純化

    實驗材料真細菌多核糖體植物多核糖體試劑、試劑盒多核糖體蔗糖梯度緩沖液蔗糖梯度緩沖液實驗步驟一、真細菌多核糖體1. 含有多核糖體(每管 0.6 ml ) 的上清鋪到 15%~30% 蔗糖梯度的上面,在該蔗糖梯度的下面為 0.5 ml 的 60% 蔗糖鋪墊液,內含如下緩沖液:多核糖體蔗糖梯度緩沖液:20

    蛋白質的純化實驗——膠體過濾法

    不同大小的蛋白質分子進入膠體過濾管柱,可依其分子量差異分離;是一種廣泛應用的蛋白質partition色析法 。實驗材料Sephacryl S-300膠體試劑、試劑盒緩沖液buffer A-150儀器、耗材色析管柱鐵夾試管鐵架水平儀收集器濃縮用離心機?濃縮用離心管實驗步驟一、儀器設備色析管柱 (Pha

    蛋白質的表達、分離、純化實驗——層析法

    蛋白質表達、分離、純化可以:(1)探索和研究基因的功能以及基因表達調控的機理;(2)供作結構與功能的研究;(3)作為催化劑、營養劑等。實驗方法原理攜帶有目標蛋白基因的質粒在大腸桿菌BL21中,在 37℃,IPTG誘導下,超量表達攜帶有6個連續組氨酸殘基的重組氯霉素酰基轉移酶蛋白,該蛋白可用一種通過共

    微生物的分離和純化實驗

    在土壤、水、空氣或人及動、植物體中,不同種類的微生物絕大多數都是混雜生活在一起,(1)用于細胞分離(2)細胞純化(3)細胞增殖培養。實驗方法原理為了獲得某種微生物的純培養,一般是根據該微生物對營養、酸堿度、氧等條件要求不同,而供給它適宜的培養條件,或加入某種抑制劑造成只利于此菌生長,而抑制其他菌生長

    微生物的分離和純化實驗

    實驗方法原理?為了獲得某種微生物的純培養,一般是根據該微生物對營養、酸堿度、氧等條件要求不同,而供給它適宜的培養條件,或加入某種抑制劑造成只利于此菌生長,而抑制其他菌生長的環境,從而淘汰其他一些不需要的微生物,再用稀釋涂布平板法或稀釋混合平板法或平板劃線分離法等分離、純化該微生物,直至得到純菌株。土

    蛋白質的純化

    蛋白質的分離純化方法很多,主要有:(一)根據蛋白質溶解度不同的分離方法1、蛋白質的鹽析  中性鹽對蛋白質的溶解度有顯著影響,一般在低鹽濃度下隨著鹽濃度升高,蛋白質的溶解度增加,此稱鹽溶;當鹽濃度繼續升高時,蛋白質的溶解度不同程度下降并先后析出,這種現象稱鹽析,將大量鹽加到蛋白質溶液中,高濃度的鹽離子

    蛋白質的純化

    實驗概要本實驗介紹了用蛋白純化試劑盒(HisTrap HP Kit)進行蛋白質純化的過程。主要試劑高分子量蛋白Marker購自上海華舜生物工程有限公司蛋白純化所用的試劑盒(HisTrap HP Kit)購自Amersham Biosciences ( USA)公司0.45 pm濾膜,磷酸緩沖液,咪唑

    微生物分離純化實驗

    實驗方法原理 該方法操作簡便,普通用于微生物的分離與純化。其基本原理包括兩方面:1. 選擇適合于待分離微生物的生長條件,如營養、酸堿度、濕度和氧等要求或加入某種抑制劑造成只利于該微生物生長,而抑制其他微生物生長的環境,從面淘汰一些不需要的微生物。2. 微生物在固體培養基上生長形成的單個菌落可以是由一

    細菌細胞的制備實驗實驗——70S核糖體的純化

    實驗材料核糖體試劑、試劑盒致密偶聯緩沖液儀器、耗材Beckman Vti50 轉頭實驗步驟1. 采用 Beckman Vti50 轉頭和 7% 至 30% (w/v) 的線性蔗糖梯度沉降來純化 70S 真細菌的核糖體。這一步可以確保大的蛋白質聚集物不會與 70S 核糖體一起沉淀下來。并可以產生致密偶

    濾膠過濾層析法蛋白質的純化實驗

    凝膠過濾層析法 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 凝膠過濾層析是根據蛋白質分子大小不同而達到分離效果的,凝膠過濾填料中含有大量微孔,只允許緩沖液及小分子量蛋白質通過,而大分子蛋白

    離子交換層析法蛋白質的純化實驗

    離子交換層析法 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 可進行離子交換的蛋白質在實驗條件下必須有單一電荷。溶液中單一電荷的蛋白質可被離子交換樹脂上的小離子置換(指與蛋白質末端離子的交換

    蛋白質提取分離純化鑒定的實驗方案

    一.血清ǐ-球蛋白的初步提取1. 血細胞與血清分離:取人血液 1000ml,放置10min, 1000rpm離心20min .棄沉淀,留上清備用(沉淀為血細胞,上部為血清).2. 乳糜粒分離:4000rpm 10°C離心10分鐘,采用密度梯度離心梯度液配置:離心管下部3/4容積加血漿,上部1/4容積

    離子交換層析法蛋白質的純化實驗

    離子交換層析在純化蛋白質的層析手段中使用最為廣泛。它對蛋白質的分辨率高,操作簡易,重復性好,成本低。按照離子交換原理,蛋白質可從大量緩沖性溶液中被分離,所以此方法尤適于蛋白質粗提物的初始純化。在分離蛋白質時,速度往往是很重要的。 如蛋白酶的初始分離和不穩定蛋白質的純化。離子交換層析提供了很多加速分離

    濾膠過濾層析法蛋白質的純化實驗

    實驗方法原理 凝膠過濾層析是根據蛋白質分子大小不同而達到分離效果的,凝膠過濾填料中含有大量微孔,只允許緩沖液及小分子量蛋白質通過,而大分子蛋白質及一些蛋白復合物則被阻擋在外。因此,高分子量的蛋白質在填料顆粒間隙中流動,比低分于量蛋白更早地被洗脫下來。最大的蛋白質分子最早流出柱子,因為它們在到達柱底前

    蛋白質提取分離純化鑒定的實驗方案

    一.血清ǐ-球蛋白的初步提取1. 血細胞與血清分離:取人血液 1000ml,放置10min, 1000rpm離心20min .棄沉淀,留上清備用(沉淀為血細胞,上部為血清).2. 乳糜粒分離:4000rpm 10°C離心10分鐘,采用密度梯度離心梯度液配置:離心管下部3/4容積加血漿,上部1/4容積

    離子交換層析法蛋白質的純化實驗

    實驗方法原理 可進行離子交換的蛋白質在實驗條件下必須有單一電荷。溶液中單一電荷的蛋白質可被離子交換樹脂上的小離子置換(指與蛋白質末端離子的交換);固定在樹脂上。通過提高溶液中相反離子濃度或降低蛋白質所帶電荷數等方法可將蛋白質從樹脂上洗脫下來。利用此法,可根據不同蛋白質電荷性質不同而將其分離開來。若已

    蛋白質分離純化設備的蛋白質的分離純化方法介紹

      一、沉淀法  沉淀法也稱溶解度法。其純化生命大分子物質的基本原理是根據各種物質的結構差異性來改變溶液的某些性質,進而導致有效成分的溶解度發生變化。  1、鹽析法  鹽析法的根據是蛋白質在稀鹽溶液中,溶解度會隨鹽濃度的增高而上升,但當鹽濃度增高到一定數值時,使水活度降低,進而導致蛋白質分子表面電荷

    常用純化制備純水的方法

      實驗室純水的制備方法有多種,最常用的為離子交換、活性炭吸附、微孔過濾、超濾、反滲透、紫外線照射等六種。  1?.離子交換法  離子交換法是以圓球形樹脂(離子交換樹脂)過濾原水,水中的離子會與固定在樹脂上的離子交換。常見的兩種離子交換方法分別是硬水軟化和去離子法。硬水軟化主要是用在反滲透(RO)處

    溶菌酶的制備、純化和鑒定

    實驗概要制備、純化和鑒定溶菌酶實驗原理溶菌酶,全稱為1,4-β-N-溶菌酶,又稱粘肽N-乙酰基胞壁酰水解酶,屬于α-乳白蛋白家族。人們對溶菌酶的研究始于上世紀初,英國細菌學家Fleming發現人的唾液、眼淚中存在有溶解細菌細胞壁的酶,因其具有溶菌作用,故命名為溶菌酶;此后人們在微生物、植物、無脊椎動

    質粒DNA的制備和純化

    實驗概要質粒(plasmid)是一種染色體外的穩定遺傳因子,大小從1~200kb不等,為雙鏈、閉環的DNA分子,并以超螺旋狀態存在于宿主細胞中。質粒主要發現于細菌、放線菌和真菌細胞中,它具有自主復制和轉錄能力,能在子代細胞中保持恒定的拷貝數,并表達所攜帶的遺傳信息。質粒在細胞內的復制一般有兩種類型:

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