質粒DNA的分離、純化和鑒定
材料、設備及試劑 一、材料 含質粒的E. coli DH5α或JM系列菌株，1.5ml塑料離心管(又稱eppendorf管),離心管架。 二、設備 微量取液器(20μl,200μl,1000μl)， 臺式高速離心機，恒溫振蕩搖床， 高壓蒸汽消毒器(滅菌鍋)， 渦旋振蕩器， 電泳儀，瓊脂糖平板電泳裝置和 恒溫水浴鍋等。 三、試劑 1、 LB液體培養基(Luria-Bertani) ：稱取蛋白胨(Tryptone)10 g，酵母提取物(Yeast extract) 5 g，NaCl 10 g，溶于800ml去離子水中，用NaOH調pH至7.5, 加去離子水至總體積1升,高壓下蒸氣滅菌20分鐘。 2、LB固體培養基：液體培養基中每升加12g瓊脂粉,高壓滅菌。 3、 氨芐青霉素(Ampicillin, Amp)母液：配成 50mg/ml水溶液, -20℃保存備用。操作步驟 一、 細菌的培養和收集 將含有質粒T-v......閱讀全文
質粒DNA的分離、純化和鑒定
材料、設備及試劑 一、材料 含質粒的E. coli DH5α或JM系列菌株，1.5ml塑料離心管(又稱eppendorf管),離心管架。 二、設備 微量取液器(20μl,200μl,1000μl)， 臺式高速離心機，恒溫振蕩搖床， 高壓蒸汽消毒器(滅菌鍋)， 渦旋振蕩器， 電泳儀，瓊脂糖平板
質粒DNA的分離、純化和鑒定－（三）
操作步驟? 一、 細菌的培養和收集? 將含有質粒pBS的DH5α菌種接種在LB固體培養基（含50μg/ml Amp）中, 37℃培養12-24小時。用無菌牙簽挑取單菌落接種到5ml LB液體培養基（含50μg/ml Amp）中,37℃振蕩培養約12小時至對數生長后期。? 二、 質粒DNA
質粒DNA的純化
聚乙二醇沉淀法質粒DNA氯化銫-溴化乙錠梯度平衡離心法純化閉環DNA(一)聚乙二醇沉淀法提取質粒DNA1)將核酸溶液所得]轉入15mlCorex 管中，再加3ml 用冰預冷的5mol/L LiCl溶液，充分混勻，用合適轉頭于4℃下以10 000轉/分離心10分鐘。LiCl可沉淀高分子RNA。2)將上
如何進行質粒DNA的分離，純化和鑒定
分離質粒時，可以將質粒去得很干凈。方法為：先用TE之類的試劑將菌液懸浮起來，再用NaOH和SDS將菌液裂解（起裂解作用的主要是NaOH，但此時，SDS可以與蛋白很好的結合）。第三步，加入酸中合第二步中的堿，并且將SDS沉淀下來，同時，SDS和蛋白也一起沉淀下來，而基因組上面有很多的蛋白，這樣基因組就
純化DNA實驗_純化質粒（堿裂解法）
實驗材料大腸桿菌試劑、試劑盒LB葡萄糖緩沖液乙酸鉀儀器、耗材離心管實驗步驟1. 單個大腸桿菌克隆接種到 2 ml 含適當抗生素的 LB 中。37℃ 劇烈振蕩孵育 5~8 小時。或者可以培養過夜使飽和。2. 倒 1.5 ml 培養液到已作標記的微量離心管中。把剩下的培養液存放在 4℃。3. 在微量離心
質粒DNA的提取與純化
一、實驗目的與原理質粒多為一些雙鏈、環狀的DNA分子，是獨立于細菌染色體之外進行復制和遺傳的輔助性遺傳單位。質粒是進行分子生物學實驗操作，進行遺傳工程改良物種等工作時最主要的DNA載體。提取質粒的基本步驟分為三步：①細菌的培養和質粒的擴增，②細菌菌體的裂解，③質粒DNA的純化。本實驗采取的菌體裂解方
柱離心法純化質粒DNA
實驗概要本實驗介紹了柱離心法純化質粒DNA的原理及操作流程。實驗原理1. 離心柱結構：特殊硅基質吸附材料，特異性吸附DNA，而RNA與蛋白質穿過。在正常情況下，核酸表面覆蓋了一層由水分子組成的親水薄膜，以維持其水溶性。高濃度鹽離子的加入破壞了核酸表面親水薄膜的相對有序排列，形成了疏水環境。在此環境中
柱離心法純化質粒DNA
實驗原理1. 離心柱結構：特殊硅基質吸附材料，特異性吸附DNA，而RNA與蛋白質穿過。在正常情況下，核酸表面覆蓋了一層由水分子組成的親水薄膜，以維持其水溶性。高濃度鹽離子的加入破壞了核酸表面親水薄膜的相對有序排列，形成了疏水環境。在此環境中，核酸與硅膠膜能有效結合，而蛋白質、代謝產物和其他污染物則不
質粒DNA的提取與純化
一、實驗目的與原理?質粒多為一些雙鏈、環狀的DNA分子，是獨立于細菌染色體之外進行復制和遺傳的輔助性遺傳單位。質粒是進行分子生物學實驗操作，進行遺傳工程改良物種等工作時最主要的DNA載體。?提取質粒的基本步驟分為三步：?①細菌的培養和質粒的擴增?②細菌菌體的裂解?③質粒DNA的純化?本實驗采取的菌體
質粒DNA的制備和純化
實驗概要質粒（plasmid）是一種染色體外的穩定遺傳因子，大小從1~200kb不等，為雙鏈、閉環的DNA分子，并以超螺旋狀態存在于宿主細胞中。質粒主要發現于細菌、放線菌和真菌細胞中，它具有自主復制和轉錄能力，能在子代細胞中保持恒定的拷貝數，并表達所攜帶的遺傳信息。質粒在細胞內的復制一般有兩種類型：
質粒DNA純化和內毒素去除
質粒是在染色體或核區之外能夠自主復制的雙鏈閉合環狀DNA分子，以超螺旋狀態存在，幾乎完全裸露，主要發現于細菌、放線菌和真菌細胞中。質粒具有自主復制和轉錄能力，能在子代細胞中保持恒定的拷貝數，并表達所攜帶的遺傳信息。?質粒DNA廣泛應用于基因工程、生物醫學的研究以及生物產品的開發和應用。質粒DNA純化
柱離心法純化質粒DNA實驗
實驗原理1. 離心柱結構：特殊硅基質吸附材料，特異性吸附DNA，而RNA與蛋白質穿過。在正常情況下，核酸表面覆蓋了一層由水分子組成的親水薄膜，以維持其水溶性。高濃度鹽離子的加入破壞了核酸表面親水薄膜的相對有序排列，形成了疏水環境。在此環境中，核酸與硅膠膜能有效結合，而蛋白質、代謝產物和其他污染物則不
質粒DNA的抽提與純化
目的 ： 采用堿變性法，學習小規模制備質粒DNA的技術原理 ： 堿變性抽提質粒DNA是基于染色體DNA與質粒DNA的變性與復性的差異而達到分離目的。在pH值高達12.6的堿性條件下，染色體DNA的氫鍵斷裂，雙螺旋結構解開而變性。質粒DNA的大部分氫鍵也斷裂，但超螺旋共價閉合環狀的兩條互補鏈不會完
質粒DNA的大量提取和純化實驗
堿法 ? ? ? ? ? ? 實驗材料 細菌 試劑、試劑盒 ST
質粒DNA的大量提取和純化實驗
實驗材料 細菌試劑、試劑盒 STE酚 氯仿NaClPEG乙醇儀器、耗材 離心管離心機抽干機實驗步驟 1、取培養至對數生長后期的含pBS質粒的細菌培養液250 ml，4 ℃下5000 g離心15分鐘,棄上清,將離心管倒置使上清液全部流盡。2、將細菌沉淀重新懸浮于50 ml用冰預冷的STE中（此步可省略
質粒DNA的提取與純化——堿解法
質粒DNA提取可以：（1）快速純化質粒；（2）用于測序、體外轉錄與翻譯、限制性內切酶消化、細菌轉化等分子生物學實驗。一、實驗目的與原理質粒多為一些雙鏈、環狀的DNA分子，是獨立于細菌染色體之外進行復制和遺傳的輔助性遺傳單位。質粒是進行分子生物學實驗操作，進行遺傳工程改良物種等工作時最主要的DNA載體
標本DNA的分離與純化
用5-10ml 1xNTE(NaCl 100mmol/L ,Tris-HCl 10mmol/l pH7.4，EDTa 1mmol/L pH8.0)調整細胞為2×107個（組織應切碎置液氮冰凍，高速攪切成粉末后，加入緩沖液）。加1/10-1/20體積（V）10mg/ml蛋白酶（Sigma Ⅷ型），
堿法分離質粒DNA的原理
現在質粒提取無論手提還是試劑盒，其根本原理大多還是堿裂解法：當菌體在NaOH和 SDS溶液中裂解時，蛋白質與DNA發生變性，當加入中和液后，質粒DNA分子能夠迅速復性，呈溶解狀態，離心時留在上清中；蛋白質與染色體DNA不變性 而呈絮狀，離心時可沉淀下來。進一步的質粒DNA獲取，手提是經過苯酚、氯仿抽
堿法分離質粒DNA的原理
現在質粒提取無論手提還是試劑盒，其根本原理大多還是堿裂解法：當菌體在NaOH和 SDS溶液中裂解時，蛋白質與DNA發生變性，當加入中和液后，質粒DNA分子能夠迅速復性，呈溶解狀態，離心時留在上清中；蛋白質與染色體DNA不變性 而呈絮狀，離心時可沉淀下來。進一步的質粒DNA獲取，手提是經過苯酚、氯仿抽
堿法分離質粒DNA的原理
現在質粒提取無論手提還是試劑盒，其根本原理大多還是堿裂解法：當菌體在NaOH和 SDS溶液中裂解時，蛋白質與DNA發生變性，當加入中和液后，質粒DNA分子能夠迅速復性，呈溶解狀態，離心時留在上清中；蛋白質與染色體DNA不變性 而呈絮狀，離心時可沉淀下來。進一步的質粒DNA獲取，手提是經過苯酚、氯仿抽
質粒DNA的堿裂解法提取與純化
??細菌質粒是一類雙鏈、閉環的DNA，大小范圍從1kb至200kb以上不等。各種質粒都是存在于細胞質中、獨立于細胞染色體之外的自主復制的遺傳成份，通常情況下可持續穩定地處于染色體外的游離狀態，但在一定條件下也會可逆地整合到寄主染色體上，隨著染色體的復制而復制，并通過細胞分裂傳遞到后代。????質粒已
質粒dna的提取和純化方法有哪些
堿裂解法、柱純化法、煮沸法
植物細胞葉綠體DNA的分離純化
實驗方法原理本實驗首先是制備植物新鮮組織勻漿、過濾,分離出完整的葉綠體,然后通過蔗糖密度梯度離心,把葉綠體與其他亞細胞結構分離開來。完整葉綠體經蛋白酶K酶解后,再通過酚-氯仿抽提獲得高純度的葉綠體DNA。實驗材料植物新鮮幼嫩葉片試劑、試劑盒緩沖液A(提取緩沖液)緩沖液B(裂解緩沖液)TE緩沖液蔗糖溶
植物細胞葉綠體DNA的分離純化
實驗方法原理 本實驗首先是制備植物新鮮組織勻漿、過濾,分離出完整的葉綠體,然后通過蔗糖密度梯度離心,把葉綠體與其他亞細胞結構分離開來。完整葉綠體經蛋白酶K酶解后,再通過酚-氯仿抽提獲得高純度的葉綠體DNA。實驗材料 植物新鮮幼嫩葉片試劑、試劑盒 緩沖液A(提取緩沖液)緩沖液B(裂解緩沖液)TE緩沖液
質粒DNA的大量提取和純化實驗——堿法
在制作酶譜、測定序列、制備探針等實驗中需要高純度、高濃度的質粒DNA,為此需要大量提取質粒DNA。大量提取的質粒DNA一般需進一步純化,常用柱層析法和氯化絕梯度離心法。實驗材料細菌試劑、試劑盒STE酚 氯仿NaClPEG乙醇儀器、耗材離心管離心機抽干機實驗步驟1、取培養至對數生長后期的含pBS質粒的
質粒DNA的大量提取和純化有哪些步驟
大提質粒和小提質粒的基本原理是一樣的，都是通過一定的方法（如加堿裂解）使在細菌內大量擴增的質粒釋放出來，然后經過去蛋白去RNA等一系列步驟純化DNA，最終將DNA提取出來。區別：1.大提用于大量菌液的提取，100ml-500ml 均可，而小提用的菌液量很少，一般1.5-5ml。2.一般試劑盒中大提比
質粒DNA的超速離心分離（二）
用以上公式算出的離心時間和實際離心結果非常接近。從公式可以看出T反比子（N4、r2），顯然在CsCl不結晶析出的前提下提高（N4、r2）將會減少離心時間,而增加轉速的效果特別明顯。但是對于某些較低轉速轉頭（如 65,000rpm以下）CsCl自形成梯度所需時間過長（10小時）以上，因此質粒DNA純樣
質粒DNA的超速離心分離（一）
一、簡述近代質粒DNA分離純化以從大腸桿菌中分離為代表，鑒于大局桿菌（E.coli）在分子生物學研究中的重要地位，從E.coli中分離純化質控DNA〈Piasmid DNA〉成為近年來超離心技術中一個重要課題。而質粒DNA的快速分離純化又對超離心設備（超速離心機、轉頭和附屬設備）提出了更高要求。E.
聚乙二醇沉淀法純化質粒DNA實驗
這種方法最早由 Richaed Treisman ( 英國，倫敦，ICRF) 參照 Lis 的工作而設計。Lis 是最早用聚乙二醇（PEG ) 分離不同大小 DNA 的人。Treisman 法被廣泛用于堿裂解法制備的質粒 DNA 的純化。本實驗來源「分子克隆實驗指南第三版」黃培堂等譯。實驗方法原理這
質粒DNA的大量提取、純化及棉花的遺傳轉化
實驗概要本實驗從轉化農桿菌中大量提取質粒DNA并純化，利用離體子房注射法將外源基因導入棉花，獲得轉基因棉花。主要試劑1. STE [0.1 mol/L NaCI、10 mmol/L Tris-HCl (pH 8.0), 1 mmol/LEDTA (pH 8.0)]2. 溶液I [50 mmol/L蔗