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  • 濃縮膠的配制方法

    一般同工酶可選擇7?5%~10%的膠(過氧化物酶和酯酶7?5%較合適,超氧化物歧化酶用10%,可溶性蛋白可根據需要配制)。將配制好的凝膠液置真空干燥器中,抽氣10Min,再加入TEMED15μl;混勻后用一細玻棒引流,沿無凹槽的玻板緩緩注入膠室中,注膠過程要防止氣泡產生。膠液加到離凹槽3CM處為止,立即用注射器輕輕在膠溶液上面鋪1CM高的水層,但不要擾亂丙烯酰胺膠面。待分離膠和水層之間出現清晰的界面時,表示聚合已完成。用注射器小心吸出上層覆蓋水,按表5-1配制好濃縮膠,抽氣后加入5μlTEMED,混合后加到分離膠上層,插入預先選擇好的樣品梳,注意不要帶入氣泡。......閱讀全文

    濃縮膠的配制方法

    一般同工酶可選擇7?5%~10%的膠(過氧化物酶和酯酶7?5%較合適,超氧化物歧化酶用10%,可溶性蛋白可根據需要配制)。將配制好的凝膠液置真空干燥器中,抽氣10Min,再加入TEMED15μl;混勻后用一細玻棒引流,沿無凹槽的玻板緩緩注入膠室中,注膠過程要防止氣泡產生。膠液加到離凹槽3CM處為止,

    電泳濃縮膠濃度怎么選取

    1,看目的蛋白的大小 一般actin以下的可以跑12膠 紅線左右可以用12或10跑 幾百的很大的用6的膠 小蛋白12的10的一般都能跑 如果不考慮效率的話...能跑多慢跑多慢,越慢跑的越好看 2,看樣品濃度多少,以及你想用幾次 通常我們是定到4微每微,總量10...5919

    聚丙烯酰胺濃縮膠不凝固

    不是的聚丙烯酰胺凝膠是AB組分的把1 是比例不標準2 膠水本身的問題3 是自己操作不當

    濃縮膠與分離膠斷裂、板間有氣泡對電泳有影響嗎?

    這主要出現在初學者中,一般對電泳不會有太大的影響。前者主要原因是拔梳子用力不均勻或過猛所致;后者是由于在解除制膠的夾子后,板未壓緊而致空氣進入引起的。

    SDSGAGE分離膠的凝固時間和濃縮膠的凝固時間

    這要取決于你加入催化劑的用量,可以稍多加一些TEMED,這樣凝固的時間就會短了。

    電泳分離技術-濃縮膠與分離膠斷裂、板間有氣泡的影響

    一般對電泳不會有太大的影響。濃縮膠與分離膠斷裂,主要原因是拔梳子用力不均勻或過猛所致;板間有氣泡,是由于在解除制膠的夾子后,板未壓緊而致空氣進入引起的。?

    蛋白質SDSPAGE電泳分離膠和濃縮膠的濃度如何確定

    1,看目的蛋白的大小一般actin以下的可以跑12膠紅線左右可以用12或10跑幾百的很大的用6的膠小蛋白12的10的一般都能跑如果不考慮效率的話...能跑多慢跑多慢,越慢跑的越好看2,看樣品濃度多少,以及你想用幾次通常我們是定到4微每微,總量100微,用10次如果濃度小的話定到2用5次

    19—26KD蛋白條帶用多少濃縮膠

    26kd蛋白用15%的膠.因為跑50kDa以上的蛋白要用10%的。50kDa-15kDa左右的話用15%的,跑更小的蛋白(比如10左右或以下的),就要適當的把膠的濃度再提高,18%或20%都可以。所以26kd蛋白用15%的膠.如果以溴酚藍跑到膠的底部為準,26kD在10%的由下往上1/4的地方,而1

    WB電泳濃縮膠沒壓成一條線

    第一、樣本本身含有高鹽。第二、積層膠長度不足,一般樣品1-2cm足矣。但是如果樣本含有高鹽可以考慮將積層膠加長到4cm左右。第三、緩沖液需要更換。使用多次的Buffer緩沖能力會大打折扣,如果樣品珍貴難得推薦用新鮮配制電泳緩沖液,反之用3次就丟棄吧!第四、上樣量有關。dxylark已經敘述。第五、電

    蛋白質電泳所加樣品在濃縮膠中跑的不成一條直線

    首先得確認你配置膠的濃度以及配膠的試劑沒問題,如果濃度沒問題的話,應該是膠板下面(原先圈著的膠條位置)存有氣泡沒有趕跑,把氣泡用吸管趕走后就OK了之前我也碰到過類似情況

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    最好有個干膠儀的,直接按照儀器要求做就可以了。如果你要讓膠自然干,需要很長時間,而且膠容易變形破裂。

    自動滴膠勻膠機

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