用大腸桿菌DNA聚合酶IKlenow片段及單鏈DNA模板進行...
用大腸桿菌 DNA 聚合酶 I Klenow 片段及單鏈 DNA 模板進行雙脫氧測序實驗試劑、試劑盒 dATP去離子蒸餾水EDTA延伸 終止混合液和示蹤混合液甲酰胺上樣緩沖液Tris-Cl酶和緩沖液大腸桿菌 DNA 聚合酶ⅠKienow 片段核酸和寡聚核苷酸寡核苷酸引物單鏈 DNA 模板放射性化合物儀器、耗材 離心機和轉頭微量離心管或微量滴定板實驗步驟 材料緩沖液和溶液試劑、緩沖液，儲液的組成參見附錄 1, 儲液使用前稀釋到適當濃度。dATP(0.1 mmol/L)可選，參見步驟 4。去離子蒸餾水EDTA(10 mmol/L,pH8.0)延伸/終止混合液和示蹤混合液這些反應混合液可通過混合 dNTP 和 ddNTP 儲液制備，參見表 12-7。甲酰胺上樣緩沖液TM 緩沖液100 mmol/LTris-Cl(pH8.5)50 mmol/LMgCl2Tris-Cl(1mol/L,pH8.0)酶和緩沖液大腸桿菌 DNA 聚合酶ⅠKie......閱讀全文
用大腸桿菌－DNA－聚合酶－I－Klenow－片段及單鏈－DNA－模板進行...
用大腸桿菌 DNA 聚合酶 I Klenow 片段及單鏈 DNA 模板進行雙脫氧測序實驗試劑、試劑盒 dATP去離子蒸餾水EDTA延伸 終止混合液和示蹤混合液甲酰胺上樣緩沖液Tris-Cl酶和緩沖液大腸桿菌 DNA 聚合酶ⅠKienow 片段核酸和寡聚核苷酸寡核苷酸引物單鏈 DNA 模板放射性化合物
大腸桿菌－DNA－－I－Klenow－片段及單鏈－DNA－模板進行雙脫氧實驗
? ? ? ? ? ? 試劑、試劑盒 dATP 去離子蒸餾水 EDTA 延伸 終止混合液 和示蹤混合液 甲酰胺上樣緩沖液 Tris-Cl
用大腸桿菌－DNA－聚合酶－I－Klenow－片段進行雙脫氧測序實驗
當 Sanger 及其同事建立第一個 DNA 鏈終止延伸法時，只有一種合適的 DNA 聚合酶可用，即大腸桿菌 DNA 聚合酶 I Klenow 片段。它具有在模板存在時聚合 dNTP 的活性，但缺乏完整聚合酶 I 的 5'-3'外切酶活性。本實驗來源于分子克隆實驗指南（第三版）下冊，
用大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ的Klenow片段標記雙鏈DNA的3’端
實驗材料?限制性內切核酸酶大腸桿菌 DNA 聚合酶 I Klenow 片段模板 DNA試劑、試劑盒?乙酸銨乙醇dNTP 溶液儀器、耗材?Sephadex G-50 離心柱水浴實驗步驟 一、材料1. 緩沖液和溶液乙酸銨（10 mol/L )乙醇2. 酶和緩沖液適宜的限制性內切核酸酶大腸桿菌 DNA 聚
用大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ的Klenow片段標記雙鏈DNA的3’端
? ? ? ? ? ? 實驗材料 限制性內切核酸酶 大腸桿菌 DNA 聚合酶 I Klenow 片段 模板 DNA 試劑、試劑盒
用大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ的Klenow片段標記雙鏈DNA的3’端
實驗材料限制性內切核酸酶大腸桿菌 DNA 聚合酶 I Klenow 片段模板 DNA試劑、試劑盒乙酸銨乙醇dNTP 溶液儀器、耗材Sephadex G-50 離心柱水浴實驗步驟一、材料1. 緩沖液和溶液乙酸銨（10 mol/L )乙醇2. 酶和緩沖液適宜的限制性內切核酸酶大腸桿菌 DNA 聚合酶 I
大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ－Klenow片段實驗
實驗方法原理 選用本方法可產生用于放射自顯影的32P末端標記分子量標志物。放射自顯影帶的強度與片段長度無關，標記DNA可穩定數月之久。?實驗材料 DNA試劑、試劑盒 dNTP儀器、耗材 水浴鍋實驗步驟 1. ?在20 μl 反應體積中，用可產生5’突出端的限制性內切酶消化0.1~0.4 μg DNA
大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ－Klenow片段實驗
標記DNA的3‘末端 修復突出的3’或5‘末端 隨即寡核苷酸引物介導 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 選用本方法可產生用于放射自顯影的32P末端標記分子量
大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ－Klenow片段實驗——標記DNA的3‘末端
實驗方法原理選用本方法可產生用于放射自顯影的32P末端標記分子量標志物。放射自顯影帶的強度與片段長度無關，標記DNA可穩定數月之久。?實驗材料DNA試劑、試劑盒dNTP儀器、耗材水浴鍋實驗步驟1. ?在20 μl 反應體積中，用可產生5’突出端的限制性內切酶消化0.1~0.4 μg DNA。?2.
基因工程的載體和工具酶5
（二）Klenow片段酶Klenow片段是大腸桿菌聚合酶 I 全酶經枯草桿菌蛋白酶處理后產生的大片段酶分子，分子量為76KD 。酶催活性：⑴5’ →3’ 的聚合酶活性 ⑵3’→5’ 的核酸外切酶活性Klenow片段的主要用途（利用5’ →3’ 的聚合酶活性）：⑴修補限制性酶消化DNA形成的3
DNA聚合酶及其應用
（一）大腸桿菌DNA聚合酶I是Kornberg A. 1956年首先從大腸桿菌E。Coli 細胞中分離出來的。它是一種多功能性的酶，包括 3種不同的酶活力：5′→ 3′聚合酶活性（模板， 帶3′－OH游離基團的引物、4dNTPs、 Mg2+ ）。雙鏈特異性的5'→3'核酸外切酶活性。
DNA聚合酶及其應用
（一）大腸桿菌DNA聚合酶I是Kornberg A. 1956年首先從大腸桿菌E。Coli 細胞中分離出來的。它是一種多功能性的酶，包括 3種不同的酶活力：5′→ 3′聚合酶活性（模板， 帶3′－OH游離基團的引物、4dNTPs、 Mg2+ ）。雙鏈特異性的5'→3'核酸外切酶活性。
大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ－Klenow片段實驗—隨即寡核苷酸引物介導
實驗方法原理此法是一種用以產生高放射比活、放射標記均勻分布的04八片段的切口平移方法。實驗材料DNA試劑、試劑盒TEdNTP儀器、耗材水浴鍋實驗步驟1. ?用合適的限制性內切酶消化DNA，DNA片段經電泳純化或乙醇沉淀，用TE緩沖液重懸。?2. ?在冰浴中混合下列物質：（1）2.5 μl 0.5mm
大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ－Klenow片段實驗——修復突出的3’或5‘末端
Klenow酶是大腸桿菌八聚合酶I的羧基端片段，它具有DNA聚合酶和3’到5’方向的外切酶活性，不含5’到3”方向的外切酶活性。實驗材料DNA試劑、試劑盒限制性內切酶EDTA儀器、耗材水浴鍋實驗步驟1. ?在20 μl 反應體積中，用限制性內切酶消化0.1~4 μg DNA。2. ?加入1 μl 0
基因操作的工具酶2
（三） DNA連接酶的反應條件影響連接效率的因素有：1. 溫度（通常在4-15℃ ）2. ATP的濃度(10μM／L - 1mM／L )3. 連接酶濃度（一般平末端大約需1～2U，黏性末端僅需0.1U）4. 反應時間（通常連接過夜）5. 插入片段和載體片段的摩爾比（ 1∶1～5∶1）（四）T4 DN
PCR技術總結
PCR技術簡史 PCR的最早設想 核酸研究已有100多年的歷史，本世紀60年代末、70年代初人們致力于研究基因的體外分離技術，Korana于1971年最早提出核酸體外擴增的設想：“經過DNA變性，與合適的引物雜交，用DNA聚合酶延伸引物，并不斷重復該過程便可克隆tRNA基因”。 PCR的實現 1
DNA聚合酶及DNA連接酶的功能和區別
DNA聚合酶，以已有的核酸序列作為模板，將4種脫氧核苷酸（A、T、G、C）按照模板的堿基排列順序，以“堿基互補原則”依次連接，聚合成為一條新的DNA鏈。 DNA連接酶，是將DNA片段上的缺刻連接起來的酶。? ? 一、DNA聚合酶? ? （一）DNA聚合酶I?? ? DNA聚合酶I（DNA pol
PCR反應體系和條件(三)
PCR技術概論?????聚合酶鏈反應(Polymerase Chain Reaction ,PCR)是80年代中期發展起來的體外核酸擴增技術。它具有特異、敏感、產率高、快速、簡便、重復性好、易自動化等突出優點；能在一個試管內將所要研究的目的基因或某一DNA片段于數小時內擴增至十萬乃至百萬倍,使肉眼能
PCR簡介/PCR儀
PCR的要素基本的PCR須具備PCR儀圖冊1.要被復制的DNA模板 Template2.界定復制范圍兩端的引物Primers.3.DNA聚合酶Taq. Polymearse4.合成的原料（四種脫氧核苷酸）及水。 PCR儀工作原理利用升溫使DNA變性，在聚合酶的作用下使單鏈復制成雙鏈，進而達到基因復制
基因操作的工具酶3
（三）T4 DNA聚合酶 T4DNA聚合酶是從T4噬菌體感染了的大腸桿菌中分離出來的， 1.酶催活性： ⑴5′→3′的聚合酶活性 ⑵3 ′→ 5 ′的核酸外切酶活性。其外切酶活性要比大腸桿菌聚合酶 I 的活性高200倍。比Klenow 片段酶強100～1,00
PCR儀技術簡史
PCR的最早設想?核酸研究已有100多年的歷史，本世紀60年代末、70年代初人們致力于研究基因的體外分離技術，Korana于1971年最早提出核酸體外擴增的設想：“經過DNA變性，與合適的引物雜交，用DNA聚合酶延伸引物，并不斷重復該過程便可克隆tRNA基因”。PCR的實現?1985年美國PE-Ce
寡核苷酸指導的單鏈－DNA－誘變實驗
? ? ? ? ? ? 實驗材料 適用于轉化的大腸桿菌菌株 用于轉化的大腸桿菌 TG1 感受態菌 試劑、試劑盒 ATP
用隨機寡核苷酸延伸法進行扣除cDNA探針的放射性標記
此方案中 cDNA 的合成是在 4 種飽和濃度的 dNTP 及一種痕量的放射性標記的 dNTP 中進行的。扣除雜交后，在大腸桿菌 DNA 聚合酶Ⅰ的 Klenow 片段作用下，富集的單鏈 cDNA 通過隨機寡核苷酸引物延伸的二次合成反應，標記成高比活性的探針。本實驗來源「分子克隆實驗指南第三版」黃
寡核苷酸指導的單鏈－DNA－誘變實驗
實驗材料 適用于轉化的大腸桿菌菌株 用于轉化的大腸桿菌 TG1 感受態菌試劑、試劑盒 ATPPE1緩沖液PE2 緩沖液噬菌體 T4 DNA 連接酶噬菌體 T4 多核苷酸激酶大腸桿菌 DNA 聚合酶ⅠKlenow 片段M13 噬菌體通用測序引物含 4 種 dNTP 的 dNTP 溶液誘變的 M
影響PCR的主要因素（溫度循環參數、引物設計與DNA聚合...2
1．Taq DNA聚合酶用Taq DNA聚合酶代替大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ的Klenow片段是使PCR普及應用的關鍵。Klenow片段不能耐受95℃的雙鏈DNA變性溫度，所以每次循環都要加入新酶；而Taq DNA聚合酶可以耐受93～95℃的高溫，避免了不斷補加多聚酶的繁瑣操作，同時使退火和
寡核苷酸指導的單鏈－DNA－誘變實驗
本文介紹了由 Zoller 和 Smith 的雙引物技術（1984,1987) 結合 Kunkel 的誘變體產量富集方法（1985) 構成的經典方案。本方案中使用的單鏈 DNA 模板含有較高的尿嘧啶殘基，因為它們是從生長于 dut 和 ung 基因突變大腸菌中的 M13 噬菌體中制備的（見方案 1)
隨機引物法標記－DNA
利用寡核苷酸作引物，DNA 聚合酶可沿單鏈模板起始 DNA 的合成（Gotilian 1969)。如果寡核苷酸的序列不均一，它們就可在模板的多位點上與模板雜交。因此模板上每一核苷酸（5' 端的核苷酸除外）的互補物將以同樣的頻率摻入產物。本實驗來源「分子克隆實驗指南第三版」黃培堂等譯。實驗方法
PCR實驗技術（一）
PCR（聚合酶鏈式反應）【原理】PCR（polymerase?chain?reaction）用于在體外將微量的目標DNA大量擴增，以便進行分析。反應體系：①樣品DNA；②引物（primer），是人工合成的一對寡核苷酸鏈（約15-20個核苷酸），用于擴增夾在雙引物與模板DNA互補區之間的區域；③4種d
影響PCR的主要因素
PCR技術必須有人工合成的合理引物和提取的樣品DNA，然后才進行自動熱循環，最后進行產物鑒定與分析。引物設計與合成目前只能在少數技術力量較強的研究院、所進行，臨床應用只需購買PCR檢測試劑盒就可開展工作，PCR自動熱循環中影響因素很多，對不同的DNA樣品，PCR反應中各種成份加入量和溫度循環參數均不
關于工具酶的連接酶的介紹
它是一種封閉DNA鏈上缺口酶，借助ATP或NAD水解提供的能量催化DNA鏈的5'-PO4與另一DNA鏈的3'-OH生成磷酸二酯鍵。但這兩條鏈必須是與同一條互補鏈配對結合的(T4DNA連接酶除外)，而且必須是兩條緊鄰DNA鏈才能被DNA連接酶催化成磷酸二酯鍵。 連接酶有T4噬菌體