高通量的PCR模板植物基因組DNA制備方法（二）
1.2 植物材料 1.2.1 水稻秧苗。將1.6-mL 96方孔板底部用6 mm電鉆頭打穿，或將舊96孔PCR板的底部剪去約4 mm。使用時將方孔板壓入少量泥巴。每孔放入1粒萌動的水稻種子，在自然日光下(或人工氣候箱)生長至3~4片葉。其他植物小苗也可用類似方法種植。 1.2.2 水稻大植株的鮮葉片或干燥葉片。 1.2.3 其他單子葉和雙子葉植物的鮮葉片或干燥葉片。 1.3 操作方法 1.3.1 鮮葉片基因組模板DNA的制備 (1) 用手摘取水稻秧苗葉一小段(對大植株的葉片，避開主葉脈撕取約3 mm寬的一小段)，放入2.2-mL或1.6-mL的96方孔板的孔中，葉片長度與方孔板深度大致相同，對其他單子葉植物葉片的操作與對水稻相同，雙子葉植物葉片量為2~4 mg(不要太多)。 ......閱讀全文
高通量的PCR模板植物基因組DNA制備方法（二）
1.2? 植物材料 ?1.2.1 水稻秧苗。將1.6-mL 96方孔板底部用6 mm電鉆頭打穿，或將舊96孔PCR板的底部剪去約4 mm。使用時將方孔板壓入少量泥巴。每孔放入1粒萌動的水稻種子，在自然日光下(或人工氣候箱)生長至3~4片葉。其他植物小苗也可用類似方法種植。?1.2.2 水稻大植株的鮮
高通量的PCR模板植物基因組DNA制備方法（四）
2.3 ?高通量的分子標記檢測?本方法制備的DNA濃度雖然低，用96針復制器加入0.5~1 μL模板進行33~35個PCR循環就可獲得足夠濃度的產物，并不需要加入特別多的Taq酶(甚至使用量為每45~50 μL PCR反應液1 U也能擴增分子標記)。該方法已對數萬份水稻樣品進行了分子標記(S
高通量的PCR模板植物基因組DNA制備方法（一）
摘? 要：制備大量生物樣品的模板DNA用于PCR檢測是費時費人工的工作。本文介紹一種高通量的植物基因組DNA(gDNA)快速制備及其用于PCR基因型檢測的操作方法。將一小段單子葉植物苗葉片(長度約30 mm或40 mm，與96方孔板的孔深大致相同) 或一小塊(約2~4 mg)雙子葉植物葉片放入9
高通量的PCR模板植物基因組DNA制備方法（三）
將純化定量的水稻品種(93-11)基因組DNA標準樣品(0.5~8 ng)與1.0 μL本方法制備的水稻品種(02428)基因組DNA混合作為模板，用InDel 標記引物(表1)進行PCR擴增和PAGE檢測。箭頭指某反應(或2個反應之間)其02428與93-11條帶的信號值大致相等(即DNA
用于PCR的植物基因組DNA快速制備方法（二）
2 結果與討論2.1 PCR模板DNA的快速制備本方法是將少量植物葉片在TE溶液或去離子水中，經鎢合金珠在離心管內的振蕩破碎，直接獲得DNA溶液。用多功能組織細胞研磨器（MTM-60）一次可操作60個樣品。瓊脂糖凝膠電泳表明，用TE和去離子水都可獲得分子量較大的DNA片段（圖1A）。用TE制備的DN
用于－PCR－的模板－DNA－制備實驗
酚-氯仿法提取石蠟組織中 DNA 改進的石蠟切片 DNA 提取方法 直接法（DNA 免提法） 冰凍片 含血標本 胸腹水或尿液 ? ? ? ? ? ?
用于－PCR－的模板－DNA－制備實驗
實驗方法原理 實驗步驟 1. 10 mm 厚石蠟切片 10～15 張，置入消毒后的 1.5 ml Eppendorf 管中。2. 脫蠟 二甲苯 1200 μl，9000 r/min，8 min×3。3. 脫水無水乙醇 1200 μl，9000 r/min，5 min×3。4. 打開 Eppendor
PCR技術（二）：PCR反應模板的制備
PCR反應的關鍵因素主要有引物的選擇與設計，酶的質量.模板的制備，在前二者都穩定可行的情況下，PCR模板的制備尤為重要.模板處理方法的選擇及操作人員的基 本技能，決定分離模板核酸(DNA或RNA)的質和量及PCR的成敗.而提高模板核酸質量的 關鍵是除去雜質(蛋白質、酶、脂肪等).除去抑制Taq DN
用于PCR的植物基因組DNA快速制備方法（一）
一種用于PCR的植物基因組DNA快速制備方法 來源：方統科技----------------------------------------------------------------------------------摘要： 本文介紹了一種用于PCR的植物基因組DNA的快速制備方法。該方法
PCR的模板制備
PCR的模板可以是DNA，也可以是RNA。 模板的取材主要依據PCR的擴增對象，可以是病原體標本如病毒、細菌、真菌等。也可以是病理生理標本如細胞、血液、羊水細胞等。法醫學標本有血斑、精斑、毛發等。 標本處理的基本要求是除去雜質，并部分純化標本中的核酸。多數樣品需要經過SDS和蛋白酶K處理。難
用于PCR的模板DNA制備實驗——改進的石蠟切片－DNA－提取方法
實驗步驟1. 5 μm 厚的石蠟切片 5 至 10 張貼在干凈的載玻片上，常規烘片，脫蠟，水化，蒸餾水清洗，無菌蒸餾水浸泡，取出晾至半干。2. 無菌尖頭刀片刮下，放入 300～900 μl 組織裂解液中，并加入 20 mg/ml 蛋白酶 K（PK）10～15 μl，封口膜封口，置 55℃ 3 h 以
用于－PCR－的模板－DNA－制備實驗——冰凍片
實驗步驟1. 將 10 μl 冰凍切片直接放入含組織裂解液的離心管中。2. 無菌尖頭刀片刮下，放入 300～900 μl 組織裂解液中，并加入 20 mg/ml 蛋白酶 K（PK）10～15 μl，封口膜封口，置 55℃ 3 h 以上。3. 其間用指輕彈離心管以利裂解。若有沉淀，再加入 5～10 μ
用于－PCR－的模板－DNA－制備實驗——含血標本
實驗步驟1. 3 ml 外周血或 1 ml 骨髓液放入含 50 μl 0.5mol/L EDTA 的無菌離心管（15 ml 管）中。2. 2000 r/min 離心 10 min。吸去血漿，用指彈勻剩余的有核細胞和紅細胞，加入紅細胞溶解液 10 ml 并混勻，常溫下放置 30 min。紅細胞溶解液配
用于PCR的模板DNA制備實驗——直接法（DNA－免提法）
實驗步驟1. 標本太少時，可將一張石蠟切片經脫蠟，水化，蒸餾水清洗，無菌蒸餾水浸泡，取出晾至半干。2. 加入 20～80 μl 直接裂解液中，加 20 mg/ml 蛋白酶 K 0.2～1 μl，放置 55℃ 裂解 3 h 以上；100℃10 min 滅活蛋白酶 K；10000 r/min 離心 10
用于－PCR－的模板－DNA－制備實驗——胸腹水或尿液
實驗步驟1. 標本 10 ml 以上，2000 r/min 離心 10 分鐘，倒去上清液。用指彈勻沉淀物，加入適量組織裂解液，37℃ 下放置半小時以上。2. 無菌尖頭刀片刮下，放入 300～900 μl 組織裂解液中，并加入 20 mg/ml 蛋白酶 K（PK）10～15 μl，封口膜封口，置 55
用于PCR的模板DNA制備實驗——酚氯仿法提取石蠟組織中DNA
模板 DNA 質量直接影響 PCR 結果，是 PCR 成功的關鍵之一。根據其檢測對象（組織細胞材料）的不同，有不同的制備方法，常用的材料有石蠟切片、冰凍切片、血細胞、胸腹水等。實驗步驟1. 10 mm 厚石蠟切片 10～15 張，置入消毒后的 1.5 ml Eppendorf 管中。2. 脫蠟 二甲
植物組織制備基因組DNA實驗
氯化銫法 CTAB法 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 加入一定量的異丙醇或乙醇，基因組的大分子DNA即沉淀形成纖維狀絮團飄浮其中， 可用玻棒將其取出，而小分子DNA則
植物組織制備基因組DNA實驗
實驗方法原理?加入一定量的異丙醇或乙醇，基因組的大分子DNA即沉淀形成纖維狀絮團飄浮其中， 可用玻棒將其取出，而小分子DNA則只形成顆粒狀沉淀附于壁上及底部， 從而達到提取的目的。實驗材料?植物組織試劑、試劑盒?抽提緩沖液十二烷基肌氨酸鈉TE異丙醇溴化乙錠氯化銫儀器、耗材?離心機實驗步驟 ? 收取1
制備DNA測序模板實驗
制備單鏈M13噬菌體DNA 小量裂解物中制備λ噬菌體DNA 雙脫氧測序的雙鏈質粒DNA的堿變性 ? ? ? ? ? ? 實驗材料 大腸桿菌
制備DNA測序模板實驗
實驗材料 大腸桿菌試劑、試劑盒 LBTEM13聚乙二醇容易讓頂層瓊脂乙酸鈉乙醇儀器、耗材 巴斯德吸管試管離心機實驗步驟 1. ?如果起始用M13復制型DNA或M13單鏈DNA，以0.5 ng 重組M13mp復制型DNA或5~10 ng 單鏈DNA轉化40 μl ?感受態大腸桿菌DH5αF'株
高通量測序中植物樣本的制備方法
高通量測序技術已廣泛應用于植物研究中，但植物材料中較多的蛋白質、多糖以及酚、脂類等次生代謝物質，提取核酸的難度往往比動物或原核生物樣本大，因此如何從植物樣本中得到高質量的核酸進行后續的測序，成為在植物高通量測序應用中的首要因素。根據核酸類型，可有如下制備方法可參考： 1. 植物基因組 DNA
植物組織制備基因組DNA實驗——CTAB法
實驗方法原理加入一定量的異丙醇或乙醇，基因組的大分子DNA即沉淀形成纖維狀絮團飄浮其中， 可用玻棒將其取出，而小分子DNA則只形成顆粒狀沉淀附于壁上及底部， 從而達到提取的目的。實驗材料植物組織試劑、試劑盒CTAB液2-疏基乙醇TE高鹽TE氯仿異戊醇儀器、耗材研缽離心機培養箱實驗步驟1. ?在所需量
血清HBV－DNA模板二種提取方法比較
摘 要 目 的 ： 選 擇 提 取 血 清 HBV－ DNA模 板 的 最 佳 實 驗 。 方 法 ： 用 堿 裂 解 法 、 直 接 煮 沸 法 二 種 方 法 提 取 血 清 HBV－ DNA模 板 然 后 進 行 對 比 分 析 。 結 果 ： 直 接 煮 沸 法 優 于 堿 裂 解
Northern雜交試驗指導手冊（4）－模板DNA的制備
A．質粒DNA的小量提取試劑及其配制含AP的LB液體培養基TE緩沖液：10mmol/L Tris-HCl (pH 8.0)1mmol/L EDTA (pH 8.0)溶液I： 25mmol/L Tris-Cl (pH 8.0)10mmol/L EDTA50mmol/L 葡萄糖高壓滅菌15min.后，4
制備DNA測序模板實驗——小量裂解物中制備λ噬菌體DNA
實驗材料重組λ噬菌體試劑、試劑盒DNA酶ⅠRNA酶ⅠPEGSMSDSEDTA異丙醇乙酸鈉TE儀器、耗材巴斯德吸管試管離心機實驗步驟1. ?在新鮮配制的λ頂層瓊脂糖和λ瓊脂糖平板上，通過在平板上裂解適于λ噬菌體生長的大腸桿菌菌株，制備重組λ噬菌體毒種原液。2. ?取700 μl 毒種液加入無菌的1.5
制備DNA測序模板實驗——制備單鏈M13噬菌體DNA
本實驗包含了用于制備適用于雙脫氧測序的模板及適用于末端標記和化學測序的DNA的實驗方案。所有用于雙脫氧測序的雙鏈模板在與引物退火前必須變性，在一般應用上，堿變性在測序中的效果比熱變性好。實驗材料大腸桿菌試劑、試劑盒LBTEM13聚乙二醇容易讓頂層瓊脂乙酸鈉乙醇儀器、耗材巴斯德吸管試管離心機實驗步驟1
植物組織制備基因組DNA實驗——氯化銫法
利用基因組DNA較長的特性，可以將其與細胞器或質粒等小分子DNA分離。在提取過程中，染色體會發生機械斷裂，產生大小不同的片段，因此分離基因組DNA時應盡量在溫和的條件下操作，如盡量減少酚/氯仿抽提、混勻過程要輕緩， 以保證得到較長的DNA。實驗方法原理加入一定量的異丙醇或乙醇，基因組的大分子DNA即
模板－DNA－的準備、實驗的組織和－PCR－擴增實驗
可以用各種方法分離基因組 DNA, 主要決定于初始材料的種類（血液還是組織）和數量。所有制備的 DNA 都應該儲存于 pH8.0 的 TE 緩沖液中并裝在滅菌的 Eppendorf 管內。本實驗來源于 PCR 實驗指南（第二版），作者：種康，瞿禮嘉。試劑、試劑盒PCR 緩沖液ddH20基因組 DNA
模板－DNA－的準備、實驗的組織和－PCR－擴增實驗
試劑、試劑盒 PCR 緩沖液ddH20基因組 DNAdNTP寡核苷酸引物儀器、耗材 離心機和轉子丙烯酸防護板過濾阻擋吸頭多道移液器PCR 儀托盤 固定器裝置底座管蓋小管實驗步驟 一、材料1. 緩沖液、溶液和試劑含 15 mmol/LMgCl2 的 10XPCR 緩沖液 (GeneAmpPCR 緩沖液
模板－DNA－的準備、實驗的組織和－PCR－擴增實驗
? ? ? ? ? ? 試劑、試劑盒 PCR 緩沖液 ddH20 基因組 DNA dNTP 寡核苷酸引物 儀器、耗材